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安徽熒光定量pcr技術(shù)

來源: 發(fā)布時間:2021-11-01

PCR引物設(shè)計的原則PCR反應(yīng)中有兩條引物,即5′端引物和3′引物。設(shè)計引物時以一條DNA單鏈為基準(zhǔn)(常以信息鏈為基準(zhǔn)),5′端引物與位于待擴(kuò)增片段5′端上的一小段DNA序列相同;3′端引物與位于待擴(kuò)增片段3′端的一小段DNA序列互補(bǔ)。(1)引物設(shè)計的基本原則引物長度:15-30bp,常用為20bp左右。引物堿基:G+C含量以40-60%為宜,G+C太少擴(kuò)增效果不佳,G+C過多易出現(xiàn)非特異條帶。ATGC比較好隨機(jī)分布,避免5個以上的嘌呤或嘧啶核苷酸的成串排列參照。引物內(nèi)部不應(yīng)出現(xiàn)互補(bǔ)序列。兩個引物之間不應(yīng)存在互補(bǔ)序列,尤其是避免3′端的互補(bǔ)重疊。引物與非特異擴(kuò)增區(qū)的序列的同源性不要超過70%,引物3′末端連續(xù)8個堿基在待擴(kuò)增區(qū)以外不能有完全互補(bǔ)序列,否則易導(dǎo)致非特異性擴(kuò)增。引物3‘端的堿基,特別是較末及倒數(shù)第二個堿基,應(yīng)嚴(yán)格要求配對,比較好選擇是G和C。引物的5′端可以修飾。如附加限制酶位點(diǎn),引入突變位點(diǎn),用生物素、熒光物質(zhì)、地高辛標(biāo)記,加入其它短序列,包括起始密碼子、終止密碼子等。英瀚斯生物,專業(yè)分子檢測平臺,高質(zhì)量pcr檢測。安徽熒光定量pcr技術(shù)

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PCR有著普遍的應(yīng)用,不僅在基礎(chǔ)研究方面,還包括醫(yī)學(xué)診斷、法醫(yī)學(xué)和農(nóng)業(yè)科學(xué)等各大領(lǐng)域,PCR技術(shù)不僅可用于基礎(chǔ)研究,還適用于日常的臨床診斷、法醫(yī)學(xué)調(diào)查和農(nóng)業(yè)生物技術(shù)研究。這些應(yīng)用需要可靠的性能、先進(jìn)的靈敏度和嚴(yán)格的標(biāo)準(zhǔn)。因此,熱循環(huán)儀和試劑必須符合這些要求和目的。分子診斷的實例包括基因檢測、基因突變檢測以及疾病檢測。在法醫(yī)學(xué)中,利用PCR進(jìn)行人類身份鑒定是通過對獨(dú)特的短串聯(lián)重復(fù)序列(STR)進(jìn)行擴(kuò)增而區(qū)分個體的。在農(nóng)業(yè)學(xué)中,PCR在食物病原體檢測、育種植物基因分型和GMO測試中具有重要作用。綜上所述,自20世紀(jì)80年代引入以來,PCR作為一種實用工具,在發(fā)現(xiàn)生物學(xué)、醫(yī)學(xué)診斷、法醫(yī)學(xué)和農(nóng)業(yè)學(xué)領(lǐng)域一直有著普遍而重要的應(yīng)用。海南pcr哪家好熒光定量pcr和實時定量pcr的區(qū)別?

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PCR由變性--退火--延伸三個基本反應(yīng)步驟構(gòu)成:

1、模板DNA的變性:模板DNA經(jīng)加熱至93℃左右一定時間后,使模板DNA雙鏈或經(jīng)PCR擴(kuò)增形成的雙鏈DNA解離,使之成為單鏈,以便它與引物結(jié)合,為下輪反應(yīng)作準(zhǔn)備。

2、模板DNA與引物的退火(復(fù)性):模板DNA經(jīng)加熱變性成單鏈后,溫度降至55℃左右,引物與模板DNA單鏈的互補(bǔ)序列配對結(jié)合。3、引物的延伸:DNA模板--引物結(jié)合物在72℃、DNA聚合酶(如TaqDNA聚合酶)的作用下,以dNTP為反應(yīng)原料,靶序列為模板,按堿基互補(bǔ)配對與半保留復(fù)制原理,合成一條新的與模板DNA鏈互補(bǔ)的半保留復(fù)制鏈。重復(fù)循環(huán)變性--退火--延伸三過程就可獲得更多的“半保留復(fù)制鏈”,而且這種新鏈又可成為下次循環(huán)的模板。每完成一個循環(huán)需2~4分鐘,2~3小時就能將待擴(kuò)目的基因擴(kuò)增放大幾百萬倍

PCR實驗技術(shù)中的多重PCR(MultiplexPCR))介紹:多重PCR可實現(xiàn)在同一反應(yīng)管中同時擴(kuò)增多個不同的片段。多重PCR不僅意味著節(jié)約時間、試劑和樣本,同時使得多個擴(kuò)增子進(jìn)行同時比較成為可能。當(dāng)一個反應(yīng)管中存在多個引物對時,如在多重PCR中,非特異性擴(kuò)增和擴(kuò)增效率的降低是較關(guān)注的問題,因為反應(yīng)的優(yōu)化不可能針對所有的引物對和片段。因此,引物的設(shè)計至關(guān)重要,以減少錯配引起的非特異性擴(kuò)增。引物序列對于目標(biāo)片段應(yīng)該是獨(dú)特的,且所有引物的Tm值差異應(yīng)在5℃內(nèi)。在進(jìn)行多重PCR前,每個引物對應(yīng)在單個反應(yīng)中驗證其特異性和擴(kuò)增效率。而且,不同大小的擴(kuò)增子應(yīng)在凝膠電泳中可區(qū)分開,以便鑒定。除了引物設(shè)計和擴(kuò)增子大小,熱啟動DNA聚合酶和特殊優(yōu)化的PCR緩沖液對于多重PCR也是必需的,它們可有助于擴(kuò)增的成功率和擴(kuò)增的特異性。英瀚斯生物,專業(yè)儀器,豐富經(jīng)驗,高質(zhì)量pcr。

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PCR實驗過程一般分為三步:DNA變性:(90℃-96℃):雙鏈DNA模板在熱作用下,氫鍵斷裂,形成單鏈DNA退火:(60℃-65℃):系統(tǒng)溫度降低,引物與DNA模板結(jié)合,形成局部雙鏈。延伸:(70℃-75℃):在Taq酶(在72℃左右,活性比較好)的作用下,以dNTP為原料,從引物的3′端開始以從5′→3′端的方向延伸,合成與模板互補(bǔ)的DNA鏈。每一循環(huán)經(jīng)過變性、退火和延伸,DNA含量即增加一倍。如圖所示:現(xiàn)在有些PCR因為擴(kuò)增區(qū)很短,即使Taq酶活性不是比較好也能在很短的時間內(nèi)復(fù)制完成,因此可以改為兩步法,即退火和延伸同時在60℃-65℃間進(jìn)行,以減少一次升降溫過程,提高了反應(yīng)速度英瀚斯生物,確保pcr檢測結(jié)果真實性。福建推薦pcr怎么樣

什么是pcr的溶解曲線?安徽熒光定量pcr技術(shù)

PCR實驗技術(shù)中cDNA第二鏈的合成方法有以下幾種:1、自身引導(dǎo)法合成的單鏈cDNA3'端能夠形成一短的發(fā)夾結(jié)構(gòu),這就為第二鏈的合成提供了現(xiàn)成的引物,當(dāng)***鏈合成反應(yīng)產(chǎn)物的DNA:RNA雜交鏈變性后利用大腸桿菌DNA聚合酶ⅠKlenow片段或反轉(zhuǎn)錄酶合成cDNA第二鏈,***用對單鏈特異性的S1核酸酶消化該環(huán),即可進(jìn)一步克隆。但自身引導(dǎo)合成法較難控制反應(yīng),而且用S1核酸酶切割發(fā)夾結(jié)構(gòu)時無一例外地將導(dǎo)致對應(yīng)于mRNA5'端序列出現(xiàn)缺失和重排,因而該方法目前很少使用。2、置換合成法該方法利用鏈在反轉(zhuǎn)錄酶作用下產(chǎn)生的cDNA:mRNA雜交鏈不用堿變性,而是在dNTP存在下,利用RNA酶H在雜交鏈的mRNA鏈上造成切口和缺口。從而產(chǎn)生一系列RNA引物,使之成為合成第二鏈的引物,在大腸桿菌DNA聚合酶Ⅰ的作用下合成第二鏈。該反應(yīng)有3個主要優(yōu)點(diǎn):(1)非常有效;(2)直接利用鏈反應(yīng)產(chǎn)物,無須進(jìn)一步處理和純化;(3)不必使用S1核酸酶來切割雙鏈cDNA中的單鏈發(fā)夾環(huán)。安徽熒光定量pcr技術(shù)

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