PCR的特異性影響因素有很多，在此我們作一歸納，供大家參考：①退火步驟的嚴(yán)格性：提高退火溫度可以減少不匹配的雜交，從而提高特異性。②減短退火時(shí)間及延伸時(shí)間可以減少錯(cuò)誤引發(fā)及錯(cuò)誤延伸。③引物二聚體是較常見的副產(chǎn)品，降低引物及酶的濃度也可以減少錯(cuò)誤引發(fā)，尤其是引物的二聚化。④改變mgcl2(有時(shí)kcl)濃度可以改進(jìn)特異性，這可能是提高反應(yīng)嚴(yán)格性或者對taq酶的直接作用。一般認(rèn)為PCR產(chǎn)物應(yīng)在48h以內(nèi)完成電泳檢測，有些比較好于當(dāng)日電泳檢測，大于48h后帶型就會(huì)出現(xiàn)不規(guī)則，甚至消失。簡述熒光定量pcr的基本原理。湖北常見pcr檢測

PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)中的直接PCR（DirectPCR）介紹：直接PCR意指直接從樣本中擴(kuò)增目的DNA，而無需核酸純化。直接PCR中，在高溫變性階段，諸如細(xì)胞、組織等材料在獨(dú)特的緩沖液中裂解，釋放出DNA。因此這種方法簡化了PCR實(shí)驗(yàn)流程，減少了動(dòng)手操作的時(shí)間，同時(shí)可避免純化步驟中DNA的損失。推薦具有高合成能力的DNA聚合酶用于直接PCR擴(kuò)增。細(xì)胞碎片、蛋白、脂質(zhì)和多糖也隨DNA釋放到裂解液中，它們會(huì)抑制PCR反應(yīng)。具有高合成能力的DNA聚合酶可以耐受這些抑制劑，從而使直接PCR成為可能。具有高合成能力的聚合酶通常具有更高靈敏度，因此可從未純化樣本中擴(kuò)增微量的DNA。河北pcr實(shí)驗(yàn)室pcr檢測做不好都有哪些原因？

PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)中的兼并引物PCR（DegeneratePrimer）介紹：兼并引物是指代替編碼單個(gè)氨基酸所有不同堿基可能性的不同序列的混合物。兼并度越低，產(chǎn)物特異性越強(qiáng)。設(shè)計(jì)引物時(shí)應(yīng)盡量選擇兼并性小的氨基酸，并避免引物3’末端兼并，因?yàn)?'端末尾3個(gè)堿基的退火足以在錯(cuò)誤位點(diǎn)起始PCR；次黃嘌呤可以同所有的堿基配對，降低引物的退火溫度。因此，在引物設(shè)計(jì)時(shí),比較選擇兼并性小的氨基酸，并避免引物3'端被兼并，因?yàn)?'端末尾3個(gè)堿基的退火足以在錯(cuò)誤位點(diǎn)起始PCR;次黃嘌呤可以同所有的堿基配對，降低引物的退火溫度。實(shí)驗(yàn)證明，用脫氧肌苷引物進(jìn)行PCR,可以代替編碼蛋白的多種兼并密碼子中的兼并堿基。

原位PCR就是在組織細(xì)胞里進(jìn)行PCR反應(yīng)，它結(jié)合了具有細(xì)胞定位能力的原位雜交和高度特異敏感的PCR技術(shù)的優(yōu)點(diǎn)，是細(xì)胞學(xué)科研與臨床診斷領(lǐng)域里的一項(xiàng)有較大潛力的新技術(shù)。原位PCR是Hasse等于1990年建立的，實(shí)驗(yàn)用的標(biāo)本是新鮮組織、石蠟包埋組織、脫落細(xì)胞、血細(xì)胞等。其基本方法為：1、固定組織或細(xì)胞:將組織細(xì)胞固定于預(yù)先用四氟乙烯包被的玻片上，并用多聚甲醛處理，再滅活除去細(xì)胞內(nèi)源性過氧化物酶。2、蛋白酶K消化處理:用60ug/ml的蛋白酶K將固定好的組織細(xì)胞片55℃消化處理2h后，96℃2min以滅活蛋白酶K。3、PCR擴(kuò)增:在組織細(xì)胞片上，加PCR反應(yīng)液，覆蓋并加液體石蠟后，直接放在擴(kuò)增儀的金屬板上，進(jìn)行PCR循環(huán)擴(kuò)增。有的基因擴(kuò)增儀帶有專門用于原位PCR的裝置。4、雜交:PCR擴(kuò)增結(jié)束后，用標(biāo)記的寡核苷酸探針進(jìn)行原位雜交。5、顯微鏡觀察結(jié)果。熒光定量pcr的原理和步驟是什么？

pcr是一種在體外擴(kuò)增特定DNA序列的技術(shù)方法，通過與特定DNA區(qū)域兩端互補(bǔ)的寡核苷酸為引物（primer）在試管中DNA聚合酶選擇性地單獨(dú)復(fù)制合成介于兩引物直接的基因片段，如同DNA復(fù)制中的半保留復(fù)制一樣，新合成的基因片段與模板鏈形成新的DNA雙鏈，經(jīng)反復(fù)的變性（denature）引物退火（anerling）和引物延伸（extention）三步循環(huán)，前一循環(huán)合成的DNA鏈成為下一循環(huán)引物結(jié)合的模板，每循環(huán)一次，反應(yīng)體系的DNA的量就增加一倍，20-30次反復(fù)循環(huán)，即可由微量的DNA模板開始獲得大量的DNA特異片段。近年來，PCR迅速發(fā)展，已深入生命科學(xué)的各個(gè)領(lǐng)域，技術(shù)方法不端完善，基本的PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)主要有經(jīng)典PCR技術(shù)、RT-PCR技術(shù)、免疫-PCR技術(shù)、PCR-SSCP技術(shù)等。pcr檢測實(shí)驗(yàn)多久出結(jié)果？廣西樣本pcr原理

英瀚斯生物可承接臨床樣本、動(dòng)物組織、細(xì)胞樣本各類pcr檢測。湖北常見pcr檢測

PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)中的反向PCR（InversePCR）介紹：反向PCR起初設(shè)計(jì)用于確定臨近未知區(qū)域的序列。反向PCR有助于研究一個(gè)基因的啟動(dòng)子序列；致*染色體重排如基因融合、異位或轉(zhuǎn)移；及病毒基因的整合。之所以稱為反向PCR，是因?yàn)橐镌O(shè)計(jì)用于向兩邊延伸而不像常規(guī)PCR中朝著彼此延伸。如今，反向PCR常用于定點(diǎn)突變，復(fù)制一個(gè)具有預(yù)期突變的目的質(zhì)粒。在研究基因組DNA未知序列的傳統(tǒng)實(shí)驗(yàn)流程中，限制性內(nèi)切酶消化和連接先于反向PCR，接著對PCR擴(kuò)增子進(jìn)行測序。對于gDNA消化，需選擇一種限制性內(nèi)切酶進(jìn)行酶切以獲得合適長度可自連的片段。同時(shí)，所選擇的內(nèi)切酶不應(yīng)該切割已知序列，所以連接發(fā)生于側(cè)翼的未知序列之間。使用低濃度的酶切DNA的片段以助于片段自連而非多個(gè)片段連接。片段自連完成后，通過反向PCR擴(kuò)增DNA的位置區(qū)域。獲得的擴(kuò)增子兩端包含一部分已知序列。之后通過測序以鑒定臨近已知序列的未知區(qū)域。湖北常見pcr檢測

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