免疫熒光通透（目的是使抗體進入胞內），0.5%TritonX-100(一種去垢劑，用PBS配制)室溫通透20min（針對胞內抗原，若是細胞膜上表達的抗原則省略該步驟）；除了TritonX-100，也可作為通透劑，并且固定后的樣品不需要通透。封閉（減少一抗和二抗與非特異位點進行結合），通透后用PBS浸洗玻片3次，每次3min，吸水紙吸干PBS，在玻片上滴加山羊血清，室溫封閉30min。常用的封閉液包括：與二抗同一來源的血清、BSA或者是羊血清。從封閉開始所有的步驟，一定要注意樣品的保濕，避免樣品的干燥，否則極易產生較高的背景。醛類固定的樣品，在用一抗孵育前用含0.3M甘氨酸的封閉液進行封閉。免疫熒光技術可以用于研究環(huán)境污染和毒物作用。CK7免疫熒光試驗

熒光素標記抗體的方法：方法及步驟：①抗體的準備：取適量已知球蛋白濃度之溶液，置入三角燒瓶中，加入生理鹽水及碳酸鹽緩沖液，使然后蛋白濃度為20mg/ml，緩沖液容量為總量的1/10，混勻，將三角燒瓶置冰槽中，電磁攪拌（速度適當以不起泡沫為宜）5～10min。②熒光素的準備：根據欲標記的蛋白質總量，按每毫克蛋白加0.01mg熒光素，用分析天平準確稱所取所需的異硫氰酸熒光素粉末。③結合（或稱標記）：邊攪拌邊將稱取的熒光色素漸漸加入球蛋白溶液中，避免將熒光素粘于三角燒瓶壁或攪拌玻棒上（大約5～10min內加完），加畢后，繼續(xù)攪拌12～18h。結合期間應保持蛋白溶液于4℃左右，故須及時添冰去水；亦可將結合裝置安放在4℃冰箱或冰庫中。FITC免疫熒光IF熒光抗體法是利用熒光標記的抗體來追蹤或檢查相應抗原的方法。

免疫熒光實驗的注意事項：為了保證熒光染色的正確性，初次試驗時需設置下述對照，以排除某些非特異性熒光染色的干擾。①標本自發(fā)熒光對照：標本加1-2滴0.01mol/L，pH7.4的PBS。②特異性對照（抑制試驗）：標本加未標記的特異性抗體，再加熒光標記的特異性抗體。③陽性對照：已知的陽性標本加熒光標記的特異性抗體。如果標本自發(fā)熒光對照和特異性對照呈無熒光或弱熒光，陽性對照和待檢標本呈強熒光，則為特異性陽性染色。一般標本在高壓汞燈下照射超過3min，就有熒光減弱現象，經熒光染色的標本較好在當天觀察，隨著時間的延長，熒光強度會逐漸下降。

細胞免疫熒光可以觀察蛋白在細胞中的定位，以及一些特殊信號分子蛋白的出核/入核的定位變化。在進行細胞免疫熒光過程中，需要用到細胞爬片，通過將爬片浸在細胞培養(yǎng)基內，細胞在爬片上生長，進而進行細胞的免疫熒光。實驗前準備：1.胰酶;2.DMEM細胞培養(yǎng)基;3.細胞培養(yǎng)12孔板或者6孔板;4.爬片。間接免疫熒光的優(yōu)點：通過增加能夠與一抗結合的二抗數量進行信號放大；與直接免疫熒光相比，通過信號放大提高檢測靈敏度。免疫熒光技術是一種以熒光素標記抗體來定位抗原物質的高度發(fā)達的標記免疫技術。早期的免疫熒光技術是將抗體與示蹤物質結合，用于定位組織或細胞內的抗原物質。

細胞的固定及免疫熒光：吸去一抗，使用PBS浸洗 3 次，每次 5 min。向孔內滴加足夠量適宜濃度的二抗，37℃，室溫避光孵育1小時。注意二抗帶有熒光素標記，因此操作過程盡量在暗處進行。吸去二抗，使用PBS浸洗 3 次，每次 5 min。向玻片上滴加DAPI，或者Hoechst復染細胞核，一般為藍色熒光；避光孵育5-10min。使用PBS輕洗細胞3 次，每次 5 min，洗去多余的DAPI。取爬片時由于爬片與培養(yǎng)皿底結合較緊，張力較大，可將注射器針頭針尖向背面做個小鉤，這樣將爬片輕輕勾起，用小鑷子取出即可。用吸水紙吸干爬片上的液體，用含抗熒光淬滅劑的封片液封片，注意將爬片反過來貼于多聚賴氨酸載玻片上，然后在熒光顯微鏡下觀察并采集圖像，注意選擇抗體對應的激發(fā)光源。免疫熒光技術可以用于研究細胞凋亡、細胞增殖和細胞分化等生物學過程。細胞免疫組化IHC

免疫熒光技術可以用于研究藥物的靶點和作用機制。CK7免疫熒光試驗

免疫熒光注意事項：對照實驗的設置：1、內源性組織背景對照：某些細胞和組織可能有固有的生物學性質，會產生背景熒光，對結果產生影響，例如色素脂褐質。因此在孵育一抗前，應對樣品進行觀察，確保抗原本身沒有信號。2、陽性對照：用確認含有待測抗原的組織或細胞，與待測標本進行統(tǒng)一處理，結果應為陽性，可證明待測抗原有一定活性并且實驗過程中用的試劑及方法均可靠。3、陰性對照：與陽性對照相反，用明確不含有待測抗原的細胞或組織切片染色，結果若為陰性，可排除染色過程中由于非特異性染色造成的假陽性結果。CK7免疫熒光試驗

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