deae-葡聚糖是一種化學修飾的葡聚糖類似物。通過用二乙基氨基乙基修飾，右旋糖酐鏈的酰胺化很容易被質子化，這使得它可以自組裝成帶負電荷核酸的納米顆粒。deae -葡聚糖是***個用于核酸轉染的陽離子聚合物。早在20世紀50年代，它就極大地增強了脊髓灰質炎病毒和SV40病毒DNA在哺乳動物細胞中的轉染。隨后，deae -葡聚糖被廣泛應用于RNA或DNA的轉染。然而，由于以下原因，deae -葡聚糖并沒有作為比較好候選物:轉染效率遠低于脂質體等其他試劑;deae -葡聚糖的細胞毒性和免疫原性不容忽視。但似乎找到一種既能改善基因表達又不影響細胞、不對細胞造成損害的技術也至關重要。福建轉染試劑靠譜

流式細胞術可以更精確地定量表達特定熒光基因的細胞，以評估轉染效率。另一種評估轉染效率的方法是通過監(jiān)測轉染后的特定蛋白表達。將轉基因引入細胞可能會改變由轉基因或細胞中其他基因編碼的蛋白質的表達。同樣，轉染小RNA也可以調(diào)節(jié)宿主細胞中特定下游遺傳靶點的表達。免疫印跡和免疫熒光染色可用于評估轉染后蛋白表達的變化。在這兩種方法中，使用特異性抗體結合靶蛋白是至關重要的，后者需要使用與一抗結合的熒光標記二級抗體來檢測感興趣的蛋白質。另一方面，在免疫印跡中，可以使用辣根過氧化物酶(HRP)偶聯(lián)的二抗與一抗結合，進行特異性蛋白檢測。免疫印跡法允許對蛋白質表達進行半定量，而免疫熒光染色法允許通過熒光顯微鏡或流式細胞術進行定量檢測。通過檢查特定蛋白表達來評估轉染效率更具可重復性和直接性。然而，使用抗體所固有的非特異性蛋白質結合問題和獲得假陰性結果的可能性，這可能是由于不及時測定蛋白質表達引起的，仍然是使用這些方法的缺點。黑龍江轉染試劑定制在轉染實驗中使用對照對于確定所使用的轉染試劑和核酸的效果和效率至關重要。

轉染是將外來核酸傳遞到真核細胞中以修飾宿主細胞的遺傳組成的過程。在過去的30年里，轉染因其廣泛應用于研究疾病的細胞過程和分子機制而越來越受歡迎。了解疾病的分子途徑，可以發(fā)現(xiàn)可能用于疾病診斷和預后的特定生物標志物。此外，轉染可以作為基因***中的策略之一，用于***無法***的遺傳性遺傳病。***，生命科學技術的進步允許將不同類型的核酸轉染到哺乳動物細胞中，這些核酸包括脫氧核糖核酸(DNA)，核糖核酸(RNA)以及小的非編碼RNA，如siRNA,shRNA和miRNA。通常轉染可分為穩(wěn)定轉染和瞬時轉染兩種類型。穩(wěn)定轉染是指通過將外源DNA整合到宿主核基因組中，或在宿主核中作為染色體外元件維持一個外源載體來維持轉基因的長期表達。該轉基因可然后通過細胞的復制進行本構性表達。相比之下，瞬時轉染不需要將核酸整合到宿主細胞基因組中。核酸可以以質粒的形式或寡核苷酸的形式轉染。因此，隨著宿主細胞的復制，轉基因表達**終會丟失。瞬時轉染通常用于短期研究，以研究特定基因敲入/敲入的影響。相比之下，穩(wěn)定轉染在需要大規(guī)模蛋白質生產(chǎn)的長期遺傳和藥理學研究中很有用。

RNA和信使RNA與DNA轉染類似，RNA可以通過基于RNA的病毒或非病毒載體導入真核細胞。與涉及DNA的轉染相比，RNA轉染可能產(chǎn)生更高的轉染效率，因為后者不需要穿越核膜。在不需要基因組整合、轉錄和轉錄后處理的情況下，RNA轉染也可能加速所需蛋白質的產(chǎn)生。使用基于信使RNA(mRNA)的載體也可以防止因整合到宿主基因組而引起的并發(fā)癥，從而允許表達特定的，所需的蛋白質。然而，RNA轉染后，蛋白質表達是短暫的，與DNA相比，RNA的穩(wěn)定性相對較差，因此在細胞內(nèi)運輸時更容易降解。小RNA是長度為18-200個堿基對(bp)的RNA分子，具有調(diào)控轉錄后基因調(diào)控和RNA修飾的能力。小RNA包括microRNAs(miRNAs)、小干擾RNA(siRNA)、短發(fā)夾RNA（shRNA）等。microRNAs和piRNAs都是內(nèi)源性單鏈小RNA。miRNAs(18-25bp)通過抑制目標mRNA或干擾其翻譯起始，參與下游mRNA的轉錄后調(diào)控。與miRNAs和piRNAs類似，siRNA也在調(diào)控轉錄后基因表達中發(fā)揮作用。siRNA的長度通常為20-24bp，可表達為內(nèi)源性或外源性雙鏈小RNA。shRNA是一種具有發(fā)夾環(huán)的內(nèi)源性雙鏈小RNA。shRNA可以結合mRNA上的互補序列來降解它。納米顆?？梢詤⑴c內(nèi)體途徑，并可以通過細胞質將DNA運輸?shù)郊毎恕?/p>

攜帶要轉染的特定核酸的載體構建可以進一步分為病毒載體或質粒載體。病毒和質粒通過存在合適的真核啟動子促進外源轉基因的表達。病毒載體可能在宿主細胞中觸發(fā)免疫原性反應，而非病毒載體的免疫原性相對較低。需要一種傳遞機制來促進靶向核酸或載體結構轉移到宿主細胞中。其中一些需要物理方法，而另一些涉及使用遞送載體，可能是脂質載體或非脂質載體，以幫助增強載體載體復合物與宿主細胞膜之間的接觸，從而促進復合物進入細胞。設計和啟動轉染試驗可能具有挑戰(zhàn)性，特別是可供選擇的轉染方法或策略種類繁多的情況下。其結構的一個共同特征是分子中存在許多帶正電的基團，這些基團被質子化成帶正電的聚合物。福建轉染試劑靠譜

用二乙基氨基乙基修飾，右旋糖酐鏈的酰胺化很容易被質子化，這使得它可以自組裝成帶負電荷核酸的納米顆粒。福建轉染試劑靠譜

影響物理轉染或機械轉染效率的因素在很大程度上取決于這些方法的基本原理。例如，電穿孔技術依賴于電場來增加宿主細胞膜的通透性，以內(nèi)化外來核酸。因此，電穿孔過程中的電壓和持續(xù)時間是決定電穿孔成功與否的重要因素。施加高壓的長時間電穿孔可能會導致細胞損傷并降低轉染效率。通過增加電脈沖的數(shù)量也可以提高電轉染效率，但這可能會降低細胞活力。另一方面，電轉染效率取決于所使用的細胞類型，每當要電轉染一種新的細胞類型時，應優(yōu)化電穿孔條件。一些細胞如T淋巴細胞，即使在標準的電穿孔條件下也可能轉染不良，而電轉染成纖維細胞通?？梢援a(chǎn)生良好的轉染結果。電穿孔緩沖液的組成是影響轉染效率的另一個關鍵參數(shù)。據(jù)報道，電穿孔緩沖液中的ATP酶抑制劑如利多卡因可提高電穿孔后的細胞活力，而使用K+-based緩沖液的轉染效率優(yōu)于Mg2+-based緩沖液。假設Mg2+離子在***ATP酶以恢復電穿孔后的離子穩(wěn)態(tài)中發(fā)揮關鍵作用，以比較大限度地減少細胞死亡，但可能會降低轉染效率。因此，應優(yōu)化由多種成分組成的合適的電穿孔緩沖液配方，以確保轉染效率和電穿孔后細胞活力之間的平衡。福建轉染試劑靠譜