瞬時(shí)轉(zhuǎn)染和轉(zhuǎn)染效率的監(jiān)測(cè):基因的瞬時(shí)表達(dá)在24-72小時(shí)內(nèi)就結(jié)束了。這種快速的瞬時(shí)表達(dá)非常適用于驗(yàn)證質(zhì)粒表達(dá)和監(jiān)測(cè)轉(zhuǎn)染步驟的效率。可以使用報(bào)告基因來(lái)確定優(yōu)化條件,其表達(dá)蛋白易檢測(cè),在目的細(xì)胞中不含此蛋白或水平很低。常用的報(bào)告基因包括氯霉素乙酰轉(zhuǎn)移酶(CAT),綠色熒光蛋白(GFP),熒光素酶(Lux或Luc)以及b-半乳糖苷酶(b-gal)??梢允褂煤?jiǎn)單的非同位素方法檢測(cè)b-gal的表達(dá)以測(cè)定轉(zhuǎn)染效率和活性。pCMVSPORT-bgal質(zhì)粒包含CMV啟動(dòng)子調(diào)控下的LacZ基因,轉(zhuǎn)染入真核細(xì)胞內(nèi)后可以直接表達(dá)bgal。結(jié)合簡(jiǎn)單的檢測(cè)步驟,可以做為監(jiān)測(cè)轉(zhuǎn)染條件的一種方便靈敏的方法建議選擇50%~80%區(qū)間密度進(jìn)行細(xì)胞轉(zhuǎn)染。蕪湖長(zhǎng)沙細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑
細(xì)胞轉(zhuǎn)染效率低下的幾個(gè)大坑:1.準(zhǔn)備不足做脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染的時(shí)候,在開(kāi)展正式實(shí)驗(yàn)前要多做預(yù)試驗(yàn),優(yōu)化轉(zhuǎn)染條件。優(yōu)化轉(zhuǎn)染條件包括:脂質(zhì)體的用量、DNA密度、細(xì)胞密度、脂質(zhì)體和DNA混合孵育時(shí)間等等。2.電壓過(guò)大做電轉(zhuǎn)的時(shí)候,如果電壓太大,往往會(huì)發(fā)生細(xì)胞大量死亡的情況。不同的細(xì)胞,需要的電壓是不一樣的。這就要求我們多做預(yù)實(shí)驗(yàn),多摸索條件。對(duì)于大多數(shù)細(xì)胞來(lái)說(shuō),其較佳電壓位于250-1250v/cm。另外,就是進(jìn)行轉(zhuǎn)染的細(xì)胞應(yīng)該處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期。處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞的抗損傷能力是較強(qiáng)的。細(xì)胞濃度應(yīng)該處于5x106到1x107/mL之間。每次轉(zhuǎn)染的質(zhì)粒應(yīng)該控制在4-6μg,如果﹥10μg,轉(zhuǎn)染效率也較大降低。電擊后,應(yīng)該將DNA和細(xì)胞混合液在室溫下放置10分鐘,使細(xì)胞恢復(fù)損傷。溫州昆明細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑使用基質(zhì)珠做為固相支持可以使貼壁細(xì)胞懸浮生長(zhǎng)。
細(xì)胞轉(zhuǎn)染的注意事項(xiàng):物品(PS)物品,比如青霉素和鏈霉素,是影響轉(zhuǎn)染的培養(yǎng)基添加物。這些物品一般對(duì)于真核細(xì)胞無(wú)毒,但陽(yáng)離子脂質(zhì)體試劑增加了細(xì)胞的通透性,使物品可以進(jìn)入細(xì)胞。這降低了細(xì)胞的活性,導(dǎo)致轉(zhuǎn)染效率低。所以,在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中不能使用物品,甚至在準(zhǔn)備轉(zhuǎn)染前進(jìn)行細(xì)胞鋪板時(shí)也要避免使用物品。這樣,在轉(zhuǎn)染前也不必潤(rùn)洗細(xì)胞。對(duì)于穩(wěn)定轉(zhuǎn)染,不要在選擇性培養(yǎng)基中使用青霉素和鏈霉素,ICIN選擇性物品的競(jìng)爭(zhēng)性克制劑。另外,為了保證無(wú)血清培養(yǎng)基中細(xì)胞的健康生長(zhǎng),使用比含血清培養(yǎng)基更少的物品量。
細(xì)胞轉(zhuǎn)染,你至少要掌握以下幾點(diǎn):胞轉(zhuǎn)染是指將外源分子如DNA,RNA等導(dǎo)入真核細(xì)胞的技術(shù)。隨著分子生物學(xué)和細(xì)胞生物學(xué)研究的不斷發(fā)展,轉(zhuǎn)染已經(jīng)成為研究和控制真核細(xì)胞基因功能的常規(guī)工具。在研究基因功能、調(diào)控基因表達(dá)、突變分析和蛋白質(zhì)生產(chǎn)等生物學(xué)試驗(yàn)中,其應(yīng)用越來(lái)越普遍??煞譃樗矔r(shí)轉(zhuǎn)染,穩(wěn)定轉(zhuǎn)染等。瞬時(shí)轉(zhuǎn)染是指外源DNA/RNA不整合到宿主染色體中,因此一個(gè)宿主細(xì)胞可存在多個(gè)拷貝數(shù),產(chǎn)生高水平的表達(dá),但通常只持續(xù)幾天,多用于啟動(dòng)子和其他調(diào)控元件的分析。一般來(lái)說(shuō),超螺旋質(zhì)粒DNA轉(zhuǎn)染效率較高,在轉(zhuǎn)染后24-72h內(nèi)分析結(jié)果,常常用到一些報(bào)告系統(tǒng)如熒光蛋白,β半乳糖苷酶等來(lái)幫助檢測(cè)。穩(wěn)定轉(zhuǎn)染是指外源DNA既可以整合到宿主染色體中,也可能作為一種游離體存在。盡管線性DNA比超螺旋DNA轉(zhuǎn)入量低但整合率高。外源DNA整合到染色體中概率很小,通常需要一些選擇性標(biāo)記反復(fù)篩選得到穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的同源細(xì)胞系。通過(guò)緩沖液的作用以及脂質(zhì)與內(nèi)體膜融合,增大內(nèi)體的內(nèi)部滲透壓。
細(xì)胞轉(zhuǎn)染那些事兒:1.選擇傳代次數(shù)較低并處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞進(jìn)行轉(zhuǎn)染。對(duì)大多數(shù)細(xì)胞而言,均需要在轉(zhuǎn)染當(dāng)天或前現(xiàn)在鋪板,第二天上午進(jìn)行轉(zhuǎn)染,48h后收集細(xì)胞進(jìn)行功能檢測(cè)。對(duì)于原代細(xì)胞,可用促有絲分裂刺激物進(jìn)行細(xì)胞活化。2.對(duì)于貼壁細(xì)胞,一般要求在轉(zhuǎn)染前一日,用胰酶處理為單細(xì)胞懸液,重新接種于培養(yǎng)皿或瓶,較好在轉(zhuǎn)染前4小時(shí)換一次新鮮培養(yǎng)液。3.支原體污染會(huì)嚴(yán)重降低細(xì)胞轉(zhuǎn)染的效率,且支原體不會(huì)像細(xì)菌污染那么明顯,因而轉(zhuǎn)染前可用環(huán)丙沙星處理細(xì)胞以除去支原體。加入混合液,將細(xì)胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個(gè)小時(shí)。唐山細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑
是目前實(shí)驗(yàn)室較方便的轉(zhuǎn)染方法之一,其轉(zhuǎn)染率較高,優(yōu)于磷酸鈣法。蕪湖長(zhǎng)沙細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑
細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)的方法有哪些:1..電穿孔法。通過(guò)短暫的高電場(chǎng)電脈沖處理細(xì)胞,沿細(xì)胞膜的電壓差異會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞膜的暫時(shí)穿孔。DNA被認(rèn)為是穿過(guò)孔擴(kuò)散到細(xì)胞內(nèi)的。電脈沖和場(chǎng)強(qiáng)的優(yōu)化對(duì)于成功的轉(zhuǎn)染非常重要,因?yàn)檫^(guò)高的場(chǎng)強(qiáng)和過(guò)長(zhǎng)的電脈沖時(shí)間會(huì)不可逆地傷害細(xì)胞膜而裂解細(xì)胞。理論上說(shuō)電穿孔法可用于各種細(xì)胞,且不需要另外采購(gòu)特殊試劑,但需要昂貴的電轉(zhuǎn)儀。此法每次轉(zhuǎn)染需要更多的細(xì)胞和DNA,因?yàn)榧?xì)胞的死亡率高。每種細(xì)胞電轉(zhuǎn)的條件都需要進(jìn)行多次優(yōu)化。2.細(xì)菌介導(dǎo)的傳染。傳染需要將目的基因克隆到特定的細(xì)菌體系中,經(jīng)過(guò)包裝細(xì)胞的包裝得到改造后的細(xì)菌,再進(jìn)行傳染。優(yōu)點(diǎn)是轉(zhuǎn)染效率特別高,尤其是難以轉(zhuǎn)染的原代細(xì)胞、細(xì)胞。缺點(diǎn)是構(gòu)建細(xì)菌周期長(zhǎng),環(huán)節(jié)多,易出錯(cuò),費(fèi)用也高蕪湖長(zhǎng)沙細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑