細胞轉染操作方法：轉染，是將外源性基因導入細胞內(nèi)的一種專門技術。隨著基因與蛋白功能研究的深入，轉染目前已成為實驗室工作中經(jīng)常涉及的基本方法。轉染大致可分為物理介導、化學介導和生物介導三類途徑。電穿孔法、顯微注射和基因屬于通過物理方法將基因導入細胞的范例；化學介導方法很多，如經(jīng)典的磷酸鈣共沉淀法、脂質體轉染方法、和多種陽離子物質介導的技術；生物介導方法，有較為原始的原生質體轉染，和現(xiàn)在比較多見的各種細菌介導的轉染技術。理想細胞轉染方法，應該具有轉染效率高、細胞毒性小等優(yōu)點。細菌介導的轉染技術，是目前轉染效率較高的方法，同時具有細胞毒性很低的優(yōu)勢。但是，細菌轉染方法的準備程序復雜，常常對細胞類型有很強的選擇性，在一般實驗室中很難普及。對于真核生物，轉染就是原核生物中轉化的同義詞。青島正規(guī)細胞高效轉染試劑推薦廠家

細胞電轉染實驗的幾點建議：1.電場強度要合適合適的電場強度對于電轉染實驗非常重要，電場強度不能過高，過高會增加細胞的死亡率；也不能過低，過低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同細胞系具有不同的較佳場強值，實驗前應測定所轉染細胞系的較佳電場強度。2.細胞狀態(tài)要好用于電轉的細胞一般選取處于對數(shù)生長期的細胞（15代以內(nèi)，傳代后2d）。因為處于對數(shù)生長期的細胞分裂旺盛，表面結構致密比穩(wěn)定期的細胞差，電轉后，細胞膜的恢復能力強，而且處于有絲分裂期的細胞更容易接受外源DNA廈門貴陽細胞高效轉染試劑脂質體轉染適用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細胞中。

細胞轉染的常用方法：人工脂質體法原理：帶正電的脂質體與核酸帶負電的磷酸基團形成復合物，進而可被細胞內(nèi)吞穩(wěn)定轉染/瞬時性轉染。這種方法幾乎適用于所有細胞，轉染效率高、重復型好，但轉染時需要去除血清，轉染效果隨細胞類型變化大。實驗步驟：在單獨試管中分別稀釋核酸及轉染試劑→脂質體與核酸的磷酸骨架結合，形成復合物→脂質體上的正電荷有助于復合物與細胞膜結合→復合物通過內(nèi)吞作用進入胞漿→分析細胞瞬時基因表達或沉默情況。

細胞轉染實驗注意事項：1.如為貼壁生長細胞，一般要求在轉染前一日，必須應用胰酶處理成單細胞懸液，重新接種于培養(yǎng)皿或瓶，轉染當日的細胞密度以70-90%（貼壁細胞）或2×106-4×106細胞/ml（懸浮細胞）為宜，較好在轉染前4h換一次新鮮培養(yǎng)液。2.用于轉染的質粒DNA必須無蛋白質，無RNA和其他化學物質的污染，OD260/280比值應在1.8以上。3.培養(yǎng)基中的血清在開始準備DNA和陽離子脂質體試劑稀釋液時要使用無血清的培養(yǎng)基，因為血清會影響復合物的形成。其實，只要在DNA-陽離子脂質體復合物形成時不含血清，在轉染過程中是可以使用血清的?？側旧w重組或基因調(diào)控變化等而演化。

細胞轉染：(1)轉染試劑的準備A.將400ul去核酸酶水加入管中，震蕩10秒鐘，溶解脂狀物。B.震蕩后將試劑放在-20攝氏度保存，使用前還需震蕩，。(2)選擇合適的混合比例(1：1-1：2/脂質體體積：DNA質量)來轉染細胞。在一個轉染管中加入合適體積的無血清培養(yǎng)基。加入合適質量的MyoD或者EGFP的DNA，震蕩后在加入合適體積的轉染試劑，再次震蕩。(3)將混合液在室溫放置10—15分鐘。(4)吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基，用PBS或者無血清培養(yǎng)基清洗一次。(5)加入混合液，將細胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個小時。(6)到時后，根據(jù)細胞種類決定是否移除混合液，之后加入完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24-48小時。脂質體轉染法陽離子脂質體表面帶正電荷。石家莊細胞高效轉染試劑廠家

轉染試劑與細胞不匹配細胞轉染較適合的不是原代細胞。青島正規(guī)細胞高效轉染試劑推薦廠家

如何提高細胞轉染實驗效率：優(yōu)化細胞生長狀態(tài)密切觀察您的細胞;確保它們狀態(tài)良好。在開始轉染細胞之前，先制定一個適當?shù)姆N板方案，使細胞密度從轉染開始到結束都保持較佳狀態(tài)。增加成功幾率—細胞是轉染過程中的一個關鍵元素，它可以是影響結果的一致性和質量的較重要的變量。此外，還常用促有絲分裂刺激物(如，細菌轉化，生長因子，條件培養(yǎng)基，以及滋養(yǎng)細胞)來活化原代培養(yǎng)細胞。貼壁細胞相比較懸浮細胞—在轉染效率方面貼壁細胞和懸浮細胞之間的差異明顯。天生趨于懸浮的細胞(如HL60，Jurkat)非常難以轉染。相反，天生為貼壁的細胞(如HEK，CHO)則可適應懸浮生長的條件。青島正規(guī)細胞高效轉染試劑推薦廠家