細胞轉染實驗簡介實驗步驟:1、細胞傳代(1)試驗準備:200ul/1mlTip頭各一盒(以上物品均需高壓滅菌),酒精棉球,廢液缸,試管架,微量移液器,記號筆,培養(yǎng)皿,離心管。(2)棄掉培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)基,用1ml的PBS溶液洗滌兩次。(3)用Tip頭加入1mlTrypsin液,消化1分鐘(37。C,5%CO2)。用手輕拍培養(yǎng)瓶壁,觀察到細胞完全從壁上脫落下來為止。(4)加入1ml的含血清培養(yǎng)基終止反應。(5)用頭多次吹吸,使細胞完全分散開。(6)將培養(yǎng)液裝入離心管中,1000rpm離心5min。(7)用培養(yǎng)液重懸細胞,細胞計數后選擇0.8X106個細胞加入一個35mm培養(yǎng)皿。(8)將合適體積完全培養(yǎng)液加入離心管中,混勻細胞后輕輕加入培養(yǎng)皿中,使其均勻分布。(9)將培養(yǎng)皿轉入CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),第二天轉染。能與核酸的磷酸根通過靜電作用,將DNA分子包裹入內。貴陽細胞高效轉染試劑進貨價
轉染的注意事項:細胞鋪板密度用于轉染的較佳細胞密度根據不同的細胞類型或應用而異。一般轉染時,貼壁細胞密度為70%-90%,懸浮細胞密度為2×106-4×106細胞/ml時效果較好。確保轉染時細胞沒有長滿或處于靜止期。因為轉染效率對細胞密度很敏感,所以在不同實驗間保持一個基本的傳代步驟很重要。鋪板細胞數目的增加可以增加轉染活性和細胞產量。在三種不同密度進行細胞鋪板的比較表明鋪板密度較高的,CAT活性也較高。得到較高活性所需的LIPOFECTAMINE試劑的量也相應增加了。這些結果說明,對于轉染相同量的DNA所需的較佳陽離子脂質體試劑的量會因細胞密度而異太原細胞高效轉染試劑廠家現貨轉染 ,是將外源性基因導入細胞內的一種專門技術。
如何提高細胞轉染實驗效率:優(yōu)化細胞生長狀態(tài)密切觀察您的細胞;確保它們狀態(tài)良好。在開始轉染細胞之前,先制定一個適當的種板方案,使細胞密度從轉染開始到結束都保持較佳狀態(tài)。增加成功幾率—細胞是轉染過程中的一個關鍵元素,它可以是影響結果的一致性和質量的較重要的變量。此外,還常用促有絲分裂刺激物(如,細菌轉化,生長因子,條件培養(yǎng)基,以及滋養(yǎng)細胞)來活化原代培養(yǎng)細胞。貼壁細胞相比較懸浮細胞—在轉染效率方面貼壁細胞和懸浮細胞之間的差異明顯。天生趨于懸浮的細胞(如HL60,Jurkat)非常難以轉染。相反,天生為貼壁的細胞(如HEK,CHO)則可適應懸浮生長的條件。
細胞轉染的原理、操作步驟以及小技巧:一、脂質體(Liposome)轉染方法原理脂質體作為體內和體外輸送載體的工具,已經研究的十分普遍,中性脂質體是利用脂質膜包裹DNA,借助脂質膜將DNA導入細胞膜內。帶正電的陽離子脂質體,DNA并沒有預先包埋在脂質體中,而是帶負電的DNA自動結合到帶正電的脂質體上,形成DNA-陽離子脂質體復合物,從而吸附到帶負電的細胞膜表面,經過內吞被導入細胞。優(yōu)點:與其它方法相比,有較高的效率和較好的重復性,它適用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細胞中,是目前條件下較方便的轉染方法之一建議選擇50%~80%區(qū)間密度進行細胞轉染。
細胞轉染的常用方法:細菌轉染:原理:對于用脂質體不能實現轉染的細胞,可以采用細菌轉染。可用于蛋白質過表達或克制,是臨床研究中較常用的方法。它通過侵染宿主細胞將外源基因整合到染色體中,可用于難轉染細胞、原代細胞的穩(wěn)定性轉染。實驗步驟:通過基因克隆生成重組細菌→采用非細菌法轉染包裝細胞系,擴增并分離得到重組細菌顆粒→純化并滴定細菌液→轉導目的細胞(含有細菌特異性的受體)→去除培養(yǎng)物中的細菌,并加入新鮮培養(yǎng)基→分析細胞瞬時基因表達或沉默情況。操作簡便,對細胞毒性小,轉染效率高受到研究者們的青睞。天津正規(guī)細胞高效轉染試劑哪家便宜
有血清時的轉染 血清一度曾被認為會降低轉染效率。貴陽細胞高效轉染試劑進貨價
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