細(xì)胞轉(zhuǎn)染方法:1.脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法陽離子脂質(zhì)體表面帶正電荷,能與核酸的磷酸根通過靜電作用,將DNA分子包裹入內(nèi),形成DNA脂復(fù)合物,也能被表面帶負(fù)電的細(xì)胞膜吸附,再通過融合或細(xì)胞內(nèi)吞進(jìn)入細(xì)胞。脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染適用于把DNA轉(zhuǎn)染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細(xì)胞中,是目前實驗室較方便的轉(zhuǎn)染方法之一,其轉(zhuǎn)染率較高,優(yōu)于磷酸鈣法。由于脂質(zhì)體對細(xì)胞有一定的毒性,所以轉(zhuǎn)染時間一般不超過24小時。常用細(xì)胞類型:cos-7、BHK、NIH3T3、Hela等2.電穿孔轉(zhuǎn)染法電流能夠可逆地?fù)舸┘?xì)胞膜形成瞬時的水通路或膜上小孔促使DNA分子進(jìn)入胞內(nèi),這種方法就是電穿孔。當(dāng)遇到某些脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染效率很低或幾乎無法轉(zhuǎn)入時建議用電穿孔法轉(zhuǎn)染。一般情況下,高電場強(qiáng)度會殺死50%-70%的細(xì)胞。現(xiàn)在針對細(xì)胞死亡開發(fā)出了一種電轉(zhuǎn)保護(hù)劑,可以較大的降低細(xì)胞的死亡率,同時提高電穿孔轉(zhuǎn)染效率脂質(zhì)體可以和帶負(fù)電荷的核酸結(jié)合后重新形成復(fù)合物。上海正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家供應(yīng)
轉(zhuǎn)染的注意事項:培養(yǎng)基中的物品物品,比如青霉素和鏈霉素,是影響轉(zhuǎn)染的培養(yǎng)基添加物。這些物品一般對于真核細(xì)胞無毒,但陽離子脂質(zhì)體試劑增加了細(xì)胞的通透性,使物品可以進(jìn)入細(xì)胞。這降低了細(xì)胞的活性,導(dǎo)致轉(zhuǎn)染效率低。所以,在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中不能使用物品,甚至在準(zhǔn)備轉(zhuǎn)染前進(jìn)行細(xì)胞鋪板時也要避免使用物品。這樣,在轉(zhuǎn)染前也不必潤洗細(xì)胞。對于穩(wěn)定轉(zhuǎn)染,不要在選擇性培養(yǎng)基中使用青霉素和鏈霉素,因為這些物品是GENETICIN選擇性物品的競爭性克制劑。無錫正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑生產(chǎn)廠家果觀察到轉(zhuǎn)染效率降低,可以試著轉(zhuǎn)染新鮮培養(yǎng)的細(xì)胞以恢復(fù)較佳結(jié)果。
細(xì)胞轉(zhuǎn)染,你至少要掌握以下幾點:主要有下面幾種方法::化學(xué)法:磷酸鈣法、DEAE-右旋糖苷法、陽離子脂質(zhì)體法;物理法:電穿孔法、顯微注射法、顆粒傳遞法;細(xì)菌介導(dǎo)法:逆轉(zhuǎn)錄細(xì)菌、腺細(xì)菌A.陽離子脂質(zhì)體法:帶正電的脂質(zhì)體與核酸帶負(fù)電的磷酸基團(tuán)形成復(fù)合物被細(xì)胞內(nèi)吞。特點:簡單通用,適用性廣,轉(zhuǎn)染效率高,重復(fù)性好,但轉(zhuǎn)染時需除血清,轉(zhuǎn)染效率隨細(xì)胞類型變化大。由于脂質(zhì)體復(fù)合物與貼壁細(xì)胞的接觸機(jī)會遠(yuǎn)大于懸浮細(xì)胞,所以貼壁比懸浮轉(zhuǎn)染效率要高。懸浮細(xì)胞建議使用電穿孔法。B.電穿孔法:利用高壓電脈沖對細(xì)胞膜的干擾,使其形成利于核酸進(jìn)入的微孔。
穩(wěn)定轉(zhuǎn)染細(xì)胞系的篩選:生長的細(xì)胞比不分裂的細(xì)胞更快的受到GENETICIN物品的影響。轉(zhuǎn)染后,在開始篩選前等待48-72小時,使細(xì)胞表達(dá)足夠量的抗性酶,保證在開始篩選時可以自我保護(hù)。轉(zhuǎn)染后48-72小時倒掉培養(yǎng)基,加入含有GENETICIN物品的培養(yǎng)基,物品的濃度根據(jù)劑量反應(yīng)曲線確定,足夠殺死未轉(zhuǎn)染細(xì)胞。因為許多因子影響到篩選所需的GENETICIN物品的較佳濃度,包括細(xì)胞類型,培養(yǎng)基和血清濃度等,所以有必要對每種細(xì)胞作一個劑量反應(yīng)曲線,確定較佳濃度。篩選較多可能需要一周時間,因為在致死劑量的GENETICIN物品存在條件下,細(xì)胞會分裂1-2次。在次培養(yǎng)細(xì)胞時使用較低劑量的物品,一般是篩選劑量的一半。篩選后的細(xì)胞一般是離散的克隆,根據(jù)實驗?zāi)康牟煌?,可以分別純化(克?。?,收集進(jìn)行大量培養(yǎng)或染色并進(jìn)行抗性克隆的計數(shù)。加入混合液,將細(xì)胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個小時。
細(xì)胞轉(zhuǎn)染為什么不能加血清:傳統(tǒng)的轉(zhuǎn)染試劑一般會增加細(xì)胞的通透性,這樣會把血清中的成分帶入細(xì)胞,造成細(xì)胞毒性。陽離子脂質(zhì)體,轉(zhuǎn)染的過程是帶正電的脂質(zhì)體與核酸帶負(fù)電的磷酸基團(tuán)形成復(fù)合物被細(xì)胞內(nèi)吞。血清中含有大量的蛋白質(zhì),在轉(zhuǎn)染過程中,帶負(fù)電的蛋白質(zhì)可能干擾陽離子脂質(zhì)體對核酸的吸附,影響轉(zhuǎn)染效率。同時,也會將血清中的蛋白帶入細(xì)胞,引發(fā)細(xì)胞毒性,故不能有血清轉(zhuǎn)染。這些轉(zhuǎn)染試劑要求在轉(zhuǎn)染前換無血清培養(yǎng)基,轉(zhuǎn)染后4-6h在更換成有血清培養(yǎng)基,這其實是為了減輕轉(zhuǎn)染造成的細(xì)胞毒性和轉(zhuǎn)染效率的降低。有血清時的轉(zhuǎn)染 血清一度曾被認(rèn)為會降低轉(zhuǎn)染效率。上海正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家推薦
一般的瞬時轉(zhuǎn)染 方法多采用脂質(zhì)體法。上海正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家供應(yīng)
影響轉(zhuǎn)染試驗的因素:1.轉(zhuǎn)染試劑跟細(xì)胞系不匹配轉(zhuǎn)染試劑跟細(xì)胞系也是講究配合默契的,使用同一種試劑,不同細(xì)胞系轉(zhuǎn)染效率通常不同。但細(xì)胞系的選擇通常是根據(jù)實驗的需要,因此在轉(zhuǎn)染實驗前應(yīng)根據(jù)實驗要求和細(xì)胞特性選擇適合的轉(zhuǎn)染試劑。每種轉(zhuǎn)染試劑都會提供一些已經(jīng)成功轉(zhuǎn)染的細(xì)胞株列表和文獻(xiàn),通過這些資料可選擇較適合實驗設(shè)計的轉(zhuǎn)染試劑。當(dāng)然,較適合的是高效、低毒、方便、廉價的轉(zhuǎn)染試劑。因為有些細(xì)胞系是不穩(wěn)定的,可能隨著培養(yǎng)時間的改變,培養(yǎng)條件的不同,不同的選擇壓力,可能引起不同的克隆選擇。因此就算是同一個細(xì)胞系,在不同條件下轉(zhuǎn)染能力的差異可能會很大。上海正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家供應(yīng)
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