1983年，外泌體初次于綿羊網(wǎng)織紅細(xì)胞中被發(fā)現(xiàn)，1987年Johnstone將其命名為“exosome”。多種細(xì)胞在正常及病理狀態(tài)下均可分泌外泌體。其主要來(lái)源于細(xì)胞內(nèi)溶酶體微粒內(nèi)陷形成的多囊泡體，經(jīng)多囊泡體外膜與細(xì)胞膜融合后釋放到胞外基質(zhì)中。所有培養(yǎng)的細(xì)胞類型均可分泌外泌體，且外泌體天然存在于體液中，包括血液、唾液、尿液、腦脊液和乳汁中。有關(guān)他們分泌和攝取及其組成、“運(yùn)載物”和相應(yīng)功能的精確分子機(jī)制剛剛開(kāi)始研究。外泌體目前被視為特異性分泌的膜泡，參與細(xì)胞間通訊，對(duì)外泌體的研究興趣日益增長(zhǎng)，無(wú)論是研究其功能還是了解如何將其用于微創(chuàng)診斷的開(kāi)發(fā)。如何高效地提取外泌體是實(shí)現(xiàn)這項(xiàng)新興液體活檢技術(shù)臨床常規(guī)化應(yīng)用的關(guān)鍵。活細(xì)胞分泌到胞外的囊泡樣小體，含有多種蛋白和核酸分子(DNA、RNA、以及miRNA)。正規(guī)外泌體提取試劑供應(yīng)商

用于外泌體提取的體液收集注意事項(xiàng)：1、抽血技巧。操作要輕柔迅速。試管可翻轉(zhuǎn)8-10次使樣本與抗凝劑混勻，避免劇烈搖晃?；靹蚝?，將試管固定垂直放置于離心分離器，在頂部記錄抽血的準(zhǔn)確時(shí)間，因?yàn)槌檠c離心之間的時(shí)間間隔可能是一個(gè)影響因素。外泌體在抽血后30分鐘內(nèi)是比較穩(wěn)定的，若時(shí)間過(guò)長(zhǎng)將導(dǎo)致外泌體數(shù)量增加。血小板極易因抽血時(shí)的物理因素而并釋放出外泌體，其中包括接觸、壓力、切力。2、抽血時(shí)間。除了血液黏度，體內(nèi)血液的各項(xiàng)指標(biāo)在1天中變化很大。生理節(jié)律會(huì)對(duì)血小板的產(chǎn)生很大的影響。白細(xì)胞的募集和循環(huán)系統(tǒng)中促炎細(xì)胞和細(xì)胞會(huì)隨時(shí)間變化。大量的具有特殊表面分子的微粒也被證明會(huì)隨時(shí)間變化。目前尚無(wú)設(shè)計(jì)較好的實(shí)驗(yàn)對(duì)證實(shí)不同時(shí)間血液中外泌體的變化，故應(yīng)在相同的時(shí)間采集樣本。目前飲食是否會(huì)對(duì)EV產(chǎn)生影響尚未可知，但是由于脂蛋白可運(yùn)載RNA且食物的攝取可以影響循環(huán)脂蛋白顆粒的類型、數(shù)量和作用，故抽血可在較后一次用餐后一段確定的時(shí)間進(jìn)行。北京外泌體提取試劑廠家批發(fā)價(jià)獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣，耗時(shí)。

外泌體的提取方法學(xué)規(guī)范、統(tǒng)一定量及鑒定等。關(guān)于外泌體的提取有超速離心、試劑盒、超濾法、蔗糖密度梯度離心等，然而各種方法均有其利弊。超速離心法是目前外泌體相關(guān)文章中的主流方法，由于離心步驟繁瑣，費(fèi)事費(fèi)力，而且步驟多導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)中容易污染，且損耗量大，使得較終回收的外泌體不穩(wěn)定。而且對(duì)于抽提細(xì)胞上清來(lái)說(shuō)，更是極為不請(qǐng)便，試想用提取300ml的上清需要6個(gè)50ml離心管，無(wú)論是過(guò)濾還是后續(xù)的每一步的離心去沉淀，都具有操作極其不便的缺點(diǎn)，總之非常麻煩。而超濾法存在外泌體會(huì)堵塞膜孔，造成濃縮效率低，濃縮管重復(fù)利用差，甚至堵塞在膜孔的外泌體還可能會(huì)粘連成團(tuán)，造成損失及較后的數(shù)據(jù)有誤差，對(duì)于后續(xù)實(shí)驗(yàn)也有影響

2018版《指導(dǎo)要求》說(shuō)明外泌體沒(méi)有限定單一的分離手段，多種手段都可以進(jìn)行細(xì)胞外囊泡的富集?！吨笇?dǎo)要求》編寫(xiě)者們認(rèn)為“高回收率，低特異性”的富集手段是指那些富集囊泡的同時(shí)會(huì)有大量的非囊泡組分被富集，甚至細(xì)胞的整個(gè)分泌組都會(huì)被摻入其中，歸入這一類的分離手段主要包括通過(guò)改變電荷或通過(guò)高聚物作用的沉淀試劑盒、低分子量截流的超濾分離、超長(zhǎng)時(shí)間和超高離心力的超速離心等。Wako的MagCapture?ExosomeIsolationKitPS（產(chǎn)品編號(hào)299-77603（2tests），293-77601（10tests）），使用PS親和法對(duì)外泌體進(jìn)行提取，損失小且能獲得高純度的外泌體。外泌體的提取分離：超速離心法（差速離心）。

外泌體的提取主要包括以下幾種方式：一是超速離心法，這是目前外泌體提取較常用的方法。此種方法得到的外泌體量多，但是純度不足，電鏡鑒定時(shí)發(fā)現(xiàn)外泌體聚集成塊，由于微泡和外泌體沒(méi)有非常統(tǒng)一的鑒定標(biāo)準(zhǔn)，也有一些研究認(rèn)為此種方法得到的是微泡不是外泌體。二是過(guò)濾離心，這種操作簡(jiǎn)單、省時(shí)，不影響外泌體的生物活性，但同樣存在純度不足的問(wèn)題。三是密度梯度離心法，用此種方法分離到的外泌體純度高，但是前期準(zhǔn)備工作繁雜，耗時(shí)，量少。四是免疫磁珠法，這種方法可以保證外泌體形態(tài)的完整，特異性高、操作簡(jiǎn)單、不需要昂貴的儀器設(shè)備，但是非中性pH和非生理性鹽濃度會(huì)影響外泌體生物活性，不便進(jìn)行下一步的實(shí)驗(yàn)。五是PS親和法，該方法將PS（磷脂酰絲氨酸）與磁珠結(jié)合，利用親和原理捕獲外泌體囊泡外的PS。該方法與免疫磁珠法相似，獲得的外泌體形態(tài)完整，純度較高。由于不使用變性劑，不影響外泌體的生物活性，外泌體可用于細(xì)胞共培養(yǎng)和體內(nèi)注射。2016.9《ScientificReports》雜志發(fā)表了該方法較新數(shù)據(jù)，表明PS法可提取相當(dāng)高純度的外泌體。六是色譜法，這種方法分離到的外泌體在電鏡下大小均一，但是需要特殊的設(shè)備，應(yīng)用不普遍。有的是通過(guò)特殊設(shè)計(jì)的過(guò)濾器過(guò)濾掉雜質(zhì)成分，有的則采用空間排阻色譜法(SEC)進(jìn)行分離純化。濟(jì)南正規(guī)外泌體提取試劑哪家好

由于外泌體的特殊結(jié)構(gòu)和功能，使得它具有潛在的應(yīng)用價(jià)值。正規(guī)外泌體提取試劑供應(yīng)商

研究探討了外泌體是否可以作為RNAi的有效載體的可能性。與脂質(zhì)體和其他合成藥物納米顆粒載體不同，外泌體含有可能增強(qiáng)內(nèi)吞作用的跨膜和膜錨定蛋白，從而促進(jìn)其內(nèi)容物的遞送。CD47是外泌體蛋白質(zhì)之一，是一個(gè)普遍表達(dá)的整合素相關(guān)跨膜蛋白，其部分功能可以保護(hù)細(xì)胞免受吞噬作用。CD47是信號(hào)調(diào)節(jié)蛋白α（SIRPα，也稱為CD172a）的配體，CD47-SIRPα間的結(jié)合能夠發(fā)出“不要吃我”的信號(hào)，從而壓制吞噬作用。病基因RAS能夠促進(jìn)胰腺病細(xì)胞增殖，增強(qiáng)胞飲作用從而促進(jìn)一些病癥細(xì)胞攝取外泌體。合成納米顆粒對(duì)細(xì)胞有一定毒性作用，但使用外泌體能夠較小化對(duì)細(xì)胞的毒性。研究人員發(fā)現(xiàn)，CD47和病基因KRAS驅(qū)動(dòng)的胞飲作用都會(huì)壓制外泌體被循環(huán)系統(tǒng)的清理，并增強(qiáng)胰腺病細(xì)胞對(duì)外泌體的特異性。所以，外泌體的這種特性增強(qiáng)了它們通過(guò)遞送RNAi來(lái)特異性靶向胰腺病中的KRAS的能力，并且使用外泌體作為單一靶向劑顯著改善了所有實(shí)驗(yàn)PDAC小鼠模型的總生存期。正規(guī)外泌體提取試劑供應(yīng)商

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