原代細(xì)胞培養(yǎng)的開始傳代：原代培養(yǎng)后由于懸浮細(xì)胞增殖，數(shù)量增加甚至達(dá)飽和密度;貼壁細(xì)胞的相互匯合，使整個瓶底逐漸被細(xì)胞覆蓋，細(xì)胞難以繼續(xù)生長繁殖，需要進(jìn)行分瓶培養(yǎng)，這種使原代細(xì)胞經(jīng)分散接種的過程稱之為傳代。值得注意的是：每次傳代細(xì)胞在生長和增殖方面受到一定的影響。開始傳代應(yīng)注意以下幾點：①細(xì)胞生長密度不高時，不能急于傳代。②原代培養(yǎng)的貼壁細(xì)胞需控制消化時間。③吹打已消化的細(xì)胞應(yīng)減少機(jī)械損傷。④開始傳代時細(xì)胞接種數(shù)量要多一些。⑤開始傳代培養(yǎng)的pH應(yīng)偏低些。小牛血清濃度可加大至15%～20%左右。給培養(yǎng)液中加入低濃度的透明質(zhì)酸復(fù)合物。在有攪拌裝置的培養(yǎng)器皿內(nèi)加入培養(yǎng)液。合肥原代細(xì)胞分離試劑盒銷售廠家

原代細(xì)胞培養(yǎng)實驗室常規(guī)步驟為：1）將動物組織從機(jī)體中取出并消毒除去存留在組織上的細(xì)菌、細(xì)菌、等污染源，這些污染源將會所需培養(yǎng)的原代細(xì)胞凋亡、停止生長和繁殖直至死亡，因此整個原代細(xì)胞培養(yǎng)過程中較全在無菌狀態(tài)下進(jìn)行。2）將組織塊在選定的蛋白酶溶液中浸泡20-30分鐘，通常在37C水浴里進(jìn)行，而蛋白酶的選定取決于部位組織和所需細(xì)胞的類型，比如成骨、肌肉、心、肝等就需要用胰蛋白酶才能解而出單個細(xì)胞，但是對于腦組織和乳腺等軟組織，就只能用分解能力較弱的膠原蛋白酶，以免損傷分散出來的單個細(xì)胞。3）將分散而成的單個細(xì)胞置于合適的培養(yǎng)基（含有特殊細(xì)胞生長因子、添加劑以及血清，或者無血清培養(yǎng)基）中培養(yǎng)，使細(xì)胞得以生存、生長和繁殖，整個過程都是在無菌情況下操作唐山原代細(xì)胞分離試劑盒廠家推薦具有體內(nèi)組織特異性特征并且純度高。

原代細(xì)胞培養(yǎng)注意事項：1.收到細(xì)胞時，要鏡下觀察是否有污染情況；收到細(xì)胞的前幾天，要做好各種倍數(shù)的鏡下拍照記錄，以防細(xì)胞出現(xiàn)問題后，可以跟公司很好地溝通。2.收到細(xì)胞后，不要馬上處理。應(yīng)置于培養(yǎng)箱中靜置4h以上再操作。如果不著急，可靜置過夜。3.細(xì)胞的靠前次傳代，一定要密度高一些傳代，原代細(xì)胞傳代密度低，很難長起來。建議1:2-1:3傳代。4.原代細(xì)胞傳代時（內(nèi)皮細(xì)胞，貼壁為例），0.25%+0.53nM的胰酶消化，1ml消化液37度培養(yǎng)箱內(nèi)消化30sec，再加入5ml培養(yǎng)基（正常消化貼壁細(xì)胞，我們使用胰酶和培養(yǎng)基的量是1:1，但是原代細(xì)胞必須用大量培養(yǎng)基中和胰酶）。5.原代細(xì)胞不建議凍存，因為凍存很容易復(fù)活不成功。如果要凍存的話，建議在P2或P3代凍存，凍存液中的血清越多越好，建議比例9（血清）:1（DMSO）。6.原代細(xì)胞復(fù)蘇時，置于37-38度水浴融化細(xì)胞，并加入10ml培養(yǎng)液（正常貼壁細(xì)胞復(fù)蘇時，也可以使用這種比例，復(fù)蘇成活率會較大提高），離心重懸鋪板。

使用RFect系列小核酸轉(zhuǎn)染試劑做siRNA/miRNA轉(zhuǎn)染測實驗注意事項：1.細(xì)胞接種：一般做轉(zhuǎn)染前現(xiàn)在接種/鋪板（細(xì)胞計數(shù)大約5*10^4cell/ml），使做轉(zhuǎn)染前細(xì)胞密度在30-50%；如果細(xì)胞是原代細(xì)胞，接種密度可以密一些，細(xì)胞計數(shù)在2*10^6cell/ml；懸浮細(xì)胞可以在轉(zhuǎn)染當(dāng)天接種/鋪板（細(xì)胞計數(shù)大約5*10^4cell/ml），待細(xì)胞狀態(tài)穩(wěn)定后做轉(zhuǎn)染前細(xì)胞密度30-40%。2.為了能在使用時有較好的轉(zhuǎn)染效果，靠前次使用建議您用24孔板做，每孔2ul轉(zhuǎn)染試劑即可。將較佳轉(zhuǎn)染條件（siRNA與轉(zhuǎn)染試劑的用量、比例）放大到對應(yīng)的孔板即可~大多數(shù)組織可以制備原代細(xì)胞，但生長的快慢及難易程度不一。

原代細(xì)胞的小知識：凍存通常我們不推薦重新凍存原代細(xì)胞，因為這可以促進(jìn)細(xì)胞衰老和/或?qū)е鹿δ茏兓Ｔ?xì)胞非常敏感，重新凍結(jié)可能導(dǎo)致細(xì)胞死亡或損傷。與細(xì)胞系不同，原代細(xì)胞增殖有限，我們建議盡早使用原代細(xì)胞進(jìn)行實驗以防止遺傳漂移，如果你正在使用一個增殖困難的細(xì)胞類型，你應(yīng)該密切監(jiān)測細(xì)胞形態(tài)，因為少量混雜的細(xì)胞（如成纖維細(xì)胞）可能隨著時間的推移，大量生長從而成為主要細(xì)胞。正常的原代細(xì)胞培養(yǎng)，在無污染的情況下，建議培養(yǎng)基中不加抗體，抗體會影響細(xì)胞的某些基因變異從而導(dǎo)致實驗數(shù)據(jù)有差異，所以cellsystems的細(xì)胞在分離提取時就考慮到這點，他們不會采用任何抗體去分離和純化的同時，通過酶消化或者離心洗滌的方法讓細(xì)胞達(dá)到95%以上的純度，這樣得到的實驗數(shù)據(jù)更為準(zhǔn)確。用多聚賴氨酸（或參照說明書）包被培養(yǎng)瓶。正規(guī)原代細(xì)胞分離試劑盒哪家好

加入的培養(yǎng)液不宜過多，避免浸泡的組織塊受輕微的波動而脫落下來。合肥原代細(xì)胞分離試劑盒銷售廠家

細(xì)胞傳代的方法都有哪些：根據(jù)不同的細(xì)胞采取不同的方法。貼壁生長的細(xì)胞用消化法傳代；部分貼壁生長的細(xì)胞用直接吹打即可傳代；懸浮生長的細(xì)胞可以采用直接吹打或離心分離后傳代，或用自然沉降法吸除上清后，再吹打。原代培養(yǎng)的開始傳代應(yīng)注意的問題？細(xì)胞沒有生長到足以覆蓋瓶底壁的大部分表面以前，不要急于傳代；原代培養(yǎng)時細(xì)胞多為混雜生長，不同的細(xì)胞有不同的消化時間，因此要根據(jù)需要注意觀察及時處理，并根據(jù)不同細(xì)胞對胰蛋白酶的耐受時間而分離和純化所需要的細(xì)胞；吹打細(xì)胞時動作要輕巧盡可能減少對細(xì)胞的損傷；開始傳代時細(xì)胞接種數(shù)量要多一些，使細(xì)胞能盡快適應(yīng)新環(huán)境而利于細(xì)胞生存和增值；隨消化分離而脫落的組織塊也可一并傳入新的培養(yǎng)瓶合肥原代細(xì)胞分離試劑盒銷售廠家