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徐州正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑服務(wù)電話

來源: 發(fā)布時間:2021-10-25

轉(zhuǎn)染的注意事項:培養(yǎng)基中的物品物品,比如青霉素和鏈霉素,是影響轉(zhuǎn)染的培養(yǎng)基添加物。這些物品一般對于真核細胞無毒,但陽離子脂質(zhì)體試劑增加了細胞的通透性,使物品可以進入細胞。這降低了細胞的活性,導(dǎo)致轉(zhuǎn)染效率低。所以,在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中不能使用物品,甚至在準備轉(zhuǎn)染前進行細胞鋪板時也要避免使用物品。這樣,在轉(zhuǎn)染前也不必潤洗細胞。對于穩(wěn)定轉(zhuǎn)染,不要在選擇性培養(yǎng)基中使用青霉素和鏈霉素,因為這些物品是GENETICIN選擇性物品的競爭性克制劑。另外,為了保證無血清培養(yǎng)基中細胞的健康生長,使用比含血清培養(yǎng)基更少的物品量。 大多數(shù)已建立的細胞系都是非整倍體,原代培養(yǎng)包括了表達不同基因組合的細胞的混合物。細胞培養(yǎng)在實驗室中保存數(shù)月和數(shù)年后會經(jīng)歷突變,總?cè)旧w重組或基因調(diào)控變化等而演化,這會導(dǎo)致和轉(zhuǎn)染相關(guān)的細胞行為的變化。如果隨時間發(fā)現(xiàn)這種變化,融化一管新鮮的細胞可能會恢復(fù)原先的轉(zhuǎn)染活性。比如,新鮮融化的NIH 3T3細胞比傳代8次的細胞表現(xiàn)出更高的轉(zhuǎn)染效率,融化細胞的進一步傳代并沒有降低轉(zhuǎn)染效率。因此,如果觀察到轉(zhuǎn)染效率降低,可以試著轉(zhuǎn)染新鮮培養(yǎng)的細胞以恢復(fù)較佳結(jié)果。震蕩后將試劑放在-20攝氏度保存,使用前還需震蕩。徐州正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑服務(wù)電話

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如何有效提高細胞轉(zhuǎn)染實驗效率:1.選擇高效的轉(zhuǎn)染方法不同轉(zhuǎn)染試劑有不同的轉(zhuǎn)染方法,但大多大同小異。轉(zhuǎn)染時應(yīng)跟據(jù)具體轉(zhuǎn)染試劑推薦的方法,但也要注意,因不同實驗室培養(yǎng)的細胞性質(zhì)不同,質(zhì)粒定量差異,操作手法上的差異等,其轉(zhuǎn)染效果可能不同,應(yīng)根據(jù)實驗室的具體條件來確定較佳轉(zhuǎn)染條件。2.確保所構(gòu)建載體的質(zhì)量。轉(zhuǎn)染載體的構(gòu)建(細菌載體,質(zhì)粒DNA,RNA,PCR產(chǎn)物,寡核苷酸等)也影響轉(zhuǎn)染結(jié)果。細菌載體對特定宿主細胞傳染效率較高,但不同細菌載體有其特定的宿主,有的還要求特定的細胞周期,如逆轉(zhuǎn)錄細菌需侵染分裂期的宿主細胞,此外還需考慮一些安全問題(如基因污染)。除載體構(gòu)建外,載體的形態(tài)及大小對轉(zhuǎn)染效率也有不同的影響,如前面提到的超螺旋及線性DNA對瞬時和穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的影響。如果基因產(chǎn)物對細胞有毒性作用,轉(zhuǎn)染也很難進行,因此選擇組成或可調(diào)控,強度合適的啟動子也很重要,同時做空載體及其它基因的相同載體構(gòu)建的轉(zhuǎn)染正對照可排除毒性影響的干擾。南京正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑報價轉(zhuǎn)染試劑的準備①將400ul去核酸酶水加入管中,震蕩10秒鐘,溶解脂狀物。

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細胞轉(zhuǎn)染那些事兒:1.設(shè)置陰性和陽性對照:一般在轉(zhuǎn)染后24-48h,靶基因即在細胞內(nèi)表達??梢罁?jù)不同的實驗?zāi)康模?4-48h后即可進行靶基因表達的檢測等實驗。2.轉(zhuǎn)染后效率的檢測方法:觀察轉(zhuǎn)染后細胞熒光情況;qPCR驗證;WB檢測敲減或過表達蛋白。3. 轉(zhuǎn)染效率低,可采取以下兩種方法:1 )復(fù)轉(zhuǎn)染,即轉(zhuǎn)染后12-24h再進行轉(zhuǎn)染,前提是該細胞對脂質(zhì)體的耐受性較好,轉(zhuǎn)染后細胞死亡數(shù)較少。2 )通過藥篩來殺死未轉(zhuǎn)入成功的細胞,前提是該質(zhì)粒帶有物品抗性的基因。4. 電轉(zhuǎn)時,不同的細胞需要的電壓是不一樣的,需要做預(yù)實驗,摸索較佳條件。對于大多數(shù)細胞而言,較佳電壓位于250-1250v/cm。電擊后,應(yīng)該將DNA和細胞混合液在室溫下放置10min,使細胞恢復(fù)損傷。

細胞轉(zhuǎn)染的原理、操作步驟以及小技巧:一、脂質(zhì)體(Liposome)轉(zhuǎn)染方法原理脂質(zhì)體作為體內(nèi)和體外輸送載體的工具,已經(jīng)研究的十分普遍,中性脂質(zhì)體是利用脂質(zhì)膜包裹DNA,借助脂質(zhì)膜將DNA導(dǎo)入細胞膜內(nèi)。帶正電的陽離子脂質(zhì)體,DNA并沒有預(yù)先包埋在脂質(zhì)體中,而是帶負電的DNA自動結(jié)合到帶正電的脂質(zhì)體上,形成DNA-陽離子脂質(zhì)體復(fù)合物,從而吸附到帶負電的細胞膜表面,經(jīng)過內(nèi)吞被導(dǎo)入細胞。優(yōu)點:與其它方法相比,有較高的效率和較好的重復(fù)性,它適用于把DNA轉(zhuǎn)染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細胞中,是目前條件下較方便的轉(zhuǎn)染方法之一。選擇傳代次數(shù)較低并處于對數(shù)生長期的細胞進行轉(zhuǎn)染。

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細胞轉(zhuǎn)染效率低下的幾個大坑:1.準備不足做脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染的時候,在開展正式實驗前要多做預(yù)試驗,優(yōu)化轉(zhuǎn)染條件。優(yōu)化轉(zhuǎn)染條件包括:脂質(zhì)體的用量、DNA密度、細胞密度、脂質(zhì)體和DNA混合孵育時間等等。2.電壓過大做電轉(zhuǎn)的時候,如果電壓太大,往往會發(fā)生細胞大量死亡的情況。不同的細胞,需要的電壓是不一樣的。這就要求我們多做預(yù)實驗,多摸索條件。對于大多數(shù)細胞來說,其較佳電壓位于250-1250v/cm。另外,就是進行轉(zhuǎn)染的細胞應(yīng)該處于對數(shù)生長期。處于對數(shù)生長期的細胞的抗損傷能力是較強的。細胞濃度應(yīng)該處于5x106到1x107/mL之間。每次轉(zhuǎn)染的質(zhì)粒應(yīng)該控制在4-6 μg,如果﹥10μg,轉(zhuǎn)染效率也較大降低。電擊后,應(yīng)該將DNA和細胞混合液在室溫下放置10分鐘,使細胞恢復(fù)損傷。對大多數(shù)細胞而言,均需要在轉(zhuǎn)染當(dāng)天或前現(xiàn)在鋪板,第二天上午進行轉(zhuǎn)染。蕪湖南昌細胞高效轉(zhuǎn)染試劑

瞬時表達分析所需的人力和時間比穩(wěn)定表達少。徐州正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑服務(wù)電話

細胞轉(zhuǎn)染效率低下的幾個大坑:1.不注意細節(jié)在轉(zhuǎn)染之前更換一次37℃預(yù)溫的培養(yǎng)基,可提高轉(zhuǎn)染效率。脂質(zhì)體和DNA/RNA混合物應(yīng)當(dāng)一滴一滴地滴下來,從培養(yǎng)皿一邊滴到另一邊,邊滴邊輕搖培養(yǎng)皿,以確保均勻分布和避免局部高濃度。這些都是一些細枝末節(jié),但是,如果不注意的話,也會造成轉(zhuǎn)染效率低下。2.細胞狀態(tài)不好細胞狀態(tài)不好,會導(dǎo)致轉(zhuǎn)染效率低下。一般進行轉(zhuǎn)染的細胞應(yīng)該處于對數(shù)生長期。如果是貼壁細胞的話,貼壁率應(yīng)該在70-80%;如果是懸浮細胞的話,應(yīng)該是6X105個/孔(24孔板),一般是轉(zhuǎn)染前現(xiàn)在換液,轉(zhuǎn)染前用無血清培養(yǎng)基或PBS洗細胞一次。轉(zhuǎn)染的整個過程都不應(yīng)該有物品。徐州正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑服務(wù)電話

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與原代細胞相關(guān)的擴展資料:

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原代細胞(primary culture cell)是指從機體取出后立即培養(yǎng)的細胞。有人把培養(yǎng)的第1代細胞與傳10代以內(nèi)的細胞統(tǒng)稱為原代細胞培養(yǎng)。原代細胞不僅廣泛應(yīng)用于分子、細胞生物學(xué)和生物醫(yī)學(xué)基礎(chǔ)研究,如蛋白質(zhì)組學(xué)、基因組學(xué)、細胞株(系)研究、DNA,RNA和遺傳學(xué)研究等,還可應(yīng)用于當(dāng)今熱門的生物醫(yī)藥產(chǎn)業(yè)如藥物篩選、藥物代謝和毒理研究、**藥物的研究等。原代細胞在生物醫(yī)藥領(lǐng)域有不可替代性作用,市場前景廣闊。