酵母重組表達的N-糖苷酶F（PNGaseF）是一種酰胺水解酶，具有以下特點：1.**高效性**：PNGaseF是去除幾乎所有N-連接寡糖從糖蛋白中有效的酶法方法。它能夠在幾分鐘內(nèi)快速且無偏倚地釋放所有的N-糖鏈，適合后續(xù)的色譜或質譜分析。2.**重組酶**：該酶是重組的酰胺酶，能夠從高甘露糖、雜合和復雜寡糖中切割內(nèi)GlcNAc和天冬氨酸殘基之間的連接。3.**純度**：純度達到95%以上，通過SDS-PAGE和完整ESI-MS進行確定。4.**儲存穩(wěn)定性**：在含有50%甘油的儲存緩沖液中，好的活性和穩(wěn)定性可維持長達24個月。5.**使用條件**：可以在原生或變性條件下使用，對于變性條件下的去糖基化，建議添加NP-40以解除SDS的抑制作用。6.**比活性**：具有高達100000U/mL的比活性。7.**His標簽**：產(chǎn)品帶有His標簽，常用于抗體及其相關蛋白的完全去糖基化。8.儲存條件：-25~-15℃保存，有效期1年。9.**無甘油版本**：還提供了無甘油版本的PNGaseF，這有助于在HPLC和質譜分析中獲得結果。10.**酶活定義**：1個酶活力單位指在10μL的反應體系中，37℃條件下1小時從10μg變性RNaseB中除去超過95%的碳水化合物所需要的酶量。這些特點使得酵母重組表達的PNGaseF成為研究和分析糖蛋白糖鏈結構的重要工具。Multiplex Probe qPCR Mix 已預混了低濃度ROX參比染料，適用于需要低濃度ROX校正的熒光定量PCR儀 。Recombinant Cynomolgus FGL1 Protein,hFc Tag

使用PreScissionProtease進行蛋白質切割后，可以采用以下方法來提高產(chǎn)品的純度：1.**親和層析**：利用GST標簽或His標簽等進行一步或多步親和層析，以高純度分離目的蛋白。2.**離子交換層析**：根據(jù)蛋白質的電荷特性，使用陽離子或陰離子交換層析進一步純化蛋白質。3.**凝膠滲透層析**：通過分子大小的排阻，去除分子量較大或較小的雜質。4.**反向層析**：使用反相高效液相色譜（HPLC）技術，根據(jù)蛋白質與固定相的疏水相互作用進行分離。5.**超濾/透析**：使用超濾膜或透析袋去除低分子量的雜質，如鹽分、緩沖液成分或小分子蛋白質。6.**二次親和層析**：在初次親和層析后，可以進行二次親和層析以進一步提高純度。7.**蛋白質純化柱**：使用商業(yè)化的蛋白質純化柱，如GST-Sepharose或Ni-NTA柱，進行快速純化。8.**等電聚焦電泳**：通過等電聚焦電泳（IEF）分離具有不同等電點的蛋白質。9.**SDS-PAGE**：使用SDS-PAGE凝膠電泳分析蛋白質的純度，并可通過凝膠切片回收相對純凈的蛋白質條帶。10.**質譜分析**：利用質譜技術鑒定蛋白質的確切質量和序列來確保蛋白質的純度和正確性。Recombinant Human TNFRSF19 Protein,His Tag蛋白在表達過程中形成包涵體，需要通過復性步驟恢復其活性。這通常涉及物質的存在下進行蛋白質的重折疊。

熒光光譜分析是一種強大的技術，可以用來優(yōu)化重組EGFP（增強型綠色熒光蛋白）的熒光特性。以下是通過熒光光譜分析來優(yōu)化EGFP熒光特性的步驟：1.**確定激發(fā)和發(fā)射波長**：-使用熒光光譜儀測量EGFP的激發(fā)和發(fā)射光譜，以確定其比較大激發(fā)波長和比較大發(fā)射波長。-這些波長是EGFP熒光特性的關鍵參數(shù)，可以用于后續(xù)的成像和檢測實驗。2.**優(yōu)化激發(fā)和發(fā)射濾光片**：-根據(jù)EGFP的激發(fā)和發(fā)射光譜，選擇合適的濾光片以比較大化熒光信號并減少背景噪聲。3.**評估熒光量子產(chǎn)率**：-熒光量子產(chǎn)率是衡量熒光效率的一個重要參數(shù)，它表示激發(fā)態(tài)分子產(chǎn)生熒光的概率。-通過比較EGFP與其他標準熒光物質的熒光強度，可以評估其量子產(chǎn)率。4.**熒光緩沖液的優(yōu)化**：-某些緩沖液成分可能會影響EGFP的熒光特性，如pH值、離子強度和抗氧化劑的存在。-通過改變緩沖液條件，可以優(yōu)化EGFP的熒光強度和穩(wěn)定性。5.**溫度和氧濃度的影響**：-溫度和氧濃度會影響EGFP的熒光特性，包括熒光強度和光穩(wěn)定性。-在熒光光譜分析中，可以通過改變溫度和氧濃度來評估這些因素對EGFP熒光特性的影響。

PreScissionProtease（PSP）是一種在蛋白質純化和分析中使用的酶，具有以下特點：1.**特異性識別**：PSP能在低溫（4°C）下特異性識別八肽序列Leu-Glu-Val-Leu-Phe-Gln-Gly-Pro或五肽序列Leu-Phe-Gln-Gly-Pro，并在Gln和Gly之間進行酶切。2.**應用**：PSP常用于去除融合蛋白中的GlutathioneS-transferase(GST)、His等標簽，有助于純化目的蛋白。3.**純度高**：PSP的純度達到95%以上，確保了實驗的準確性和重復性。4.**穩(wěn)定性好**：PSP在含有50%甘油的儲存緩沖液中，-80℃長期儲存，有效期2年；小量分裝-20℃保存，有效期6個月。5.**酶活定義**：在5℃條件下反應16小時，能夠切割100μg的GST標簽蛋白達90%以上所需的酶量定義為一個活性單位。6.**兼容性強**：PSP的酶切體系中可以兼容1%TritonX-100、Tween-20或NP-40，10mMEDTA和500mMNaCl。7.**注意事項**：某些化合物如100mMZnCl2、4mMAEBSF和100μMChymostatin會抑制PSP的酶活性50%以上。8.**優(yōu)化酶切效率**：建議進行預實驗摸索實驗濃度，實際操作中，建議酶用量1:25-1:100U/μg融合蛋白。Recombinant Biotinylated Human MAGE-A3 (HLA-A*24:02) Protein, His-Avi Tag 是一種通過重組DNA技術。

IdeSProtease的分子改造技術主要通過以下幾個方面提高其穩(wěn)定性和比活性：1.**定向進化**：利用定向進化方法，通過多輪的突變和篩選，獲得具有改善特性的酶變體。定向進化不依賴于大規(guī)模突變文庫的構建，而是通過定點突變操作，顯著提高酶分子的穩(wěn)定性。2.**半理性設計與理性設計**：結合半理性設計和理性設計的方法，通過計算模擬和結構分析，對酶的三維結構進行優(yōu)化，以提高其在各種環(huán)境條件下的穩(wěn)定性。3.**糖基化修飾**：作為一種新的酶分子穩(wěn)定性改造技術，糖基化可以提高酶的穩(wěn)定性，防止酶在逆境中的失活，從而提高其在實際應用中的催化活性。4.**消除蛋白質中的不穩(wěn)定性弱點**：通過分析蛋白質結構中的穩(wěn)定性弱點，進行定點突變，以增強蛋白質的整體穩(wěn)定性。5.**提高比活性**：通過分子改造，提高IdeSProtease的比活性，使其在更低的濃度下就能有效地催化反應，從而提高整體的催化效率。6.**增加底物特異性**：改造后的IdeSProtease除了可以切割人IgG1~4、猴、羊、兔IgG外，還對小鼠IgG2a、IgG3具有特異性切割活性。。

泛素連接酶E3識別特定的靶蛋白，并促進E2上的泛素轉移到靶蛋白的賴氨酸殘基上，形成泛素化標記。Recombinant Cynomolgus FGL1 Protein,hFc Tag

通過SDS-PAGE（聚丙烯酰胺凝膠電泳）和Westernblot（西方印跡）可以有效地檢測帶有His標簽的泛素蛋白的純度和完整性。以下是進行這些檢測的步驟：###SDS-PAGE步驟：1.**樣品準備**：-將重組泛素蛋白溶解在適當?shù)木彌_液中，通常含有還原劑（如DTT或β-巰基乙醇）以斷裂二硫鍵。-將樣品在95-100°C下加熱5分鐘以變性蛋白質。2.**凝膠準備**：-根據(jù)需要的分辨率選擇合適的凝膠濃度（例如，12%或15%凝膠用于檢測20-100kDa的蛋白質）。3.**上樣**：-將變性后的樣品加入到凝膠的相應孔中，同時加入分子量標記物作為參照。4.**電泳**：-在恒定電壓或恒定電流下進行電泳，直到樣品在凝膠中充分分離。5.**染色**：-使用考馬斯亮藍或其他蛋白質染色劑對凝膠進行染色，以可視化蛋白質條帶。6.**分析**：-通過比較樣品條帶與分子量標記物，評估蛋白質的分子量和純度。###Westernblot步驟：1.**轉膜**：-將SDS-PAGE分離的蛋白質從凝膠轉移到PVDF或硝酸纖維素膜上。2.**封閉**：-使用封閉液（如5%脫脂奶粉或1%BSA溶液）封閉膜上未被蛋白占據(jù)的部分，以減少非特異性結合。3.**一抗孵育**：-使用特異性識別His標簽的抗體（一抗）與膜上的蛋白質孵育，通常在4°C過夜。Recombinant Cynomolgus FGL1 Protein,hFc Tag