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裸鼠疾病動物模型建模供應商

來源: 發(fā)布時間:2021-10-21

1、動物模型名稱:橄欖油聯合酒精致肝硬化門脈高壓大鼠模型2、實驗動物種屬:SD大鼠3、實驗動物性別:雄性4、實驗動物年齡:5周 5、實驗動物體重:150g-180g6、實驗動物環(huán)境:SPF級 1、實驗方法:橄欖油聯合酒精誘導。按0.3mL/100g體重,背頸部皮下注射50%CCl4的橄欖油溶液,***注射量加倍(6mL/kg體重),2次/周,皮下注射共13周;造模前4周為10%酒精溶液喂養(yǎng)代替飲水,4周后改為30%酒精溶液灌胃(30%酒精溶液灌胃1mL/100g體重,3次/周)。繼續(xù)正常飼養(yǎng)1個月。實驗結束測量門靜脈血流量(PBF)和腸系膜上動脈血流量(SMABF)。處死,取肝臟進行組織病理學檢查。2、檢測標準:門靜脈及腸系膜上動脈血流量情況與正常對照組比較均增加,差異有統(tǒng)計學意義肝組織病理可見肝硬化病理改變。模型應適用于多數研究者使用,容易復制,實驗中便于操作和采集各種標本。裸鼠疾病動物模型建模供應商

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    圖2是從側面展示的壓迫元件插入椎間孔的結構示意圖。圖3是術后大鼠四肢表現情況。圖4是術后28天大鼠的雙下肢縮足閾值變化曲線圖。圖5是重復經顱磁刺激對大鼠背根神經壓迫模型的影響。具體實施方式以下通過具體的實施例對本發(fā)明的技術方案做進一步的描述。以下的實施例是對本發(fā)明的進一步說明,而不是限制本發(fā)明的范圍。實施例1、模型的制備1、腹腔注射1%戊巴比妥鈉(40mg/kg)麻醉大鼠(220-250g),背部剃毛,碘伏消毒背部皮膚,俯臥位固定于動物手術臺上,鋪無菌巾。2、于大鼠腰4到骶1水平左側作一2-3cm縱行切口,切開皮膚,鈍性分離椎旁肌至橫突上方,暴露腰4椎間孔,腰5椎間孔(椎旁肌可用自制拉鉤保持分離狀態(tài))。3、將2根***端11為4mm,第二端12為2mm,直徑為,第二端12置于腰4椎間孔及腰5椎間孔外。如圖1和2所示,可以看到腰4錐體1、腰5錐體2、腰6錐體3、l型棒10、腰4神經根4和腰5神經根5的位置關系。當l型棒10的***端11插入腰4錐體1的腰4椎間孔后,會對腰4神經根4起到壓迫作用;同樣的,當l型棒10的***端11插入腰5錐體2的腰5椎間孔后,會對腰5神經根5起到壓迫作用。從而達到模擬腰椎間盤突出壓迫神經根的目的,制備得到大鼠慢性背根神經壓迫模型。普陀區(qū)提供疾病動物模型建模收集研究疾病的生物學信息資料。

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    pirb在軸突生長錐表達,位于富含肌動蛋白的前緣和synapsin免疫陽性的囊泡中,在神經元突起的表達呈點狀分布。文獻表明,pirb表達隨年齡增加,特別是在老齡認知損傷的小鼠海馬中,pirb能夠抑制軸突再生和突觸可塑性。研究表明小鼠aβ寡聚體對海馬長時程增強的破壞作用需要pirb的參與,在ad轉基因模型中,pirb不僅參與成年小鼠記憶缺失,而且介導幼年小鼠視皮層突觸可塑性的丟失。這些研究提示我們,pirb參與突觸可塑性,抑制pirb可能對ad起到***效應。但是在cns,pirb的功能和下游抑制性信號通路仍然未被闡明,因此迫切需要pirb的細胞和動物模型。目前對于pirb基因功能的研究,多采用可溶性的pirb的胞外段(pirbextracellularpeptide,pep)和抑制劑,或者采用慢病毒轉染。前者受到是否能夠透過血腦屏障和抑制劑效率的影響,后者慢病毒轉染在原代細胞和在體的轉染效率比較低,使研究pirb的功能受到極大的限制。為解決這些問題,我們通過crispr/cas9技術建立了pirb基因敲入小鼠,將pirb基因敲入c57bl/6j的rosa26位點,為研究pirb在免疫系統(tǒng)或者神經系統(tǒng)的作用和機制提供了很好的工具。技術實現要素:本發(fā)明的目的在于提供pirb基因敲入的小鼠動物模型。

1、動物模型名稱:固定制動致制動應激大鼠模型2、實驗動物種屬:SD大鼠3、實驗動物性別:雄性4、實驗動物年齡:成年5、實驗動物體重:180~220g6、實驗動物環(huán)境:SPF級 。1、實驗方法:采用固定制動方法。大鼠每天固定5~6小時進行制動應激,連續(xù)制動40天。2、檢測標準:模型組大鼠體重增長速度較正常對照緩慢;曠場試驗的結果顯示,造模結束時與正常對照組比較,模型組大鼠的水平穿越格數、垂直運動次數、理毛時間均減少,**格停留時間、糞便粒數均增加;ELISA的結果顯示,造模結束時與正常對照組比較,模型組大鼠CRH、ACTH、CORT含量均明顯增高。上海東寰為您提供完善的大鼠動物疾病模型。

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1、動物模型名稱:腹主動脈縮窄致心衰大鼠模型2、實驗動物種屬:SD大鼠3、實驗動物性別:雌性4、實驗動物年齡:成年5、實驗動物體重:180~220g6、實驗動物環(huán)境:SPF級 1、實驗方法:采用主動脈縮窄法建立模型大鼠麻醉后,仰臥位固定、去腹毛、消毒,沿腹正中線切開皮膚及肌層,分離出腹主動脈,在腎動脈上方將腹主動脈與鈍頭8號探針一起結扎后,小心抽出針頭。手術造模后大鼠正常飼養(yǎng)3個月。大鼠終末體重(BW),心室重(VW),計算心體比(VW/BW),并進行心功能檢測,包括心率(HR)、左室收縮壓(LVSP)、左室舒張末壓(LVEDP)及左室最大壓力上升及下降速度(±dp/dtmax),并對心肌組織進行病理學檢測.2、檢測標準:模型組大鼠VW/BW明顯增加,LVSP明顯降低,LVEDP明顯升高,±dp/dtmax則***減小,與正常對照組相比具有統(tǒng)計學差異。病理學檢測結果表明心肌出現典型心衰樣病理改變。查閱已有的相關小鼠模型綜述文獻。無錫品牌疾病動物模型建模

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    步驟i.將步驟h的吸附柱放入收集管,12000rpm離心2min。步驟j.吸附柱放到一個新的,在吸附柱膜**加入50~200μl滅菌水或者洗脫液,停留5min。(將無菌水或者洗脫液加熱到65℃能夠增加洗脫的得率)。步驟i.基因組dna定量,洗脫的基因組dna可以通過電泳鑒定。方法2:一種低成本基因組dna的粗提方法:步驟a.每只小鼠剪下一段尾巴(2-5mm),放入離心管中,加入100μl尾部消化緩沖液,注意不要剪尾太長;步驟b.將離心管及其內容物于56℃孵育過夜;步驟c.過夜后將離心管于98℃孵育13min,使蛋白酶k失活;步驟d.在微型離心機以**大轉速旋轉15min,上清直接用于pcr體系(每50μlpcr體系加入上清2μl)。尾消化緩沖液成分:50mmkcl10mmtris-hcl()%tritonx-100(b)長鏈pcr反應:長鏈引物:pcrprimers1(℃):擴增片段:5’armforwardprimer(f1):5’-tacgccacagggagtccaagaatg-3’5’kireverseprimer(r1):5’-gatggggagagtgaagcagaacg-3’pcrprimers2(℃):擴增片段:3’kiforwardprimer(f2):5’-ctgctgtccattccttattccatag-3’3’armreverseprimer(r2):5’-ctggaaatcaggctgcaaatctc-3’pirb基因敲除型有上述兩條擴增片段,野生型等位基因沒有擴增產物。裸鼠疾病動物模型建模供應商

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