RIP-Seq是一種檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)蛋白/RNA互作組的高通量技術(shù)。該技術(shù)通過聯(lián)合免疫共沉淀技術(shù)和RNA測(cè)序技術(shù)對(duì)目的蛋白在特定細(xì)胞/組織內(nèi)的互作蛋白/RNA，進(jìn)行系統(tǒng)的檢測(cè)和分析。該技術(shù)適用于目的蛋白在特定細(xì)胞/組織中的蛋白/RNA互作組數(shù)據(jù)檢測(cè)，或用于不同遺傳背景/實(shí)驗(yàn)條件下的互作組差異研究。因此，該技術(shù)是研究細(xì)胞內(nèi)蛋白/RNA互作調(diào)控網(wǎng)絡(luò)的常規(guī)前置技術(shù)。

RIP-Seq：用于構(gòu)建目的蛋白的RNA互作組數(shù)據(jù)，或用于不同遺傳背景/實(shí)驗(yàn)條件下的互作組差異。 RIP-seq實(shí)驗(yàn)廣泛應(yīng)用于研究全基因組RNA-蛋白質(zhì)相互作用及轉(zhuǎn)錄后調(diào)控機(jī)制。江西RNA免疫共沉淀檢測(cè)RIP-Sequence

RIP-qPCR實(shí)驗(yàn)（RNA Immunoprecipitation followed by quantitative PCR）是一種用于研究細(xì)胞內(nèi)特定蛋白質(zhì)與RNA相互作用的技術(shù)。該技術(shù)結(jié)合了免疫沉淀（Immunoprecipitation）和實(shí)時(shí)熒光定量PCR（quantitative PCR，qPCR）的方法，旨在識(shí)別和定量與特定蛋白質(zhì)結(jié)合的RNA分子。在RIP-qPCR實(shí)驗(yàn)中，首先使用針對(duì)目標(biāo)蛋白質(zhì)的特異性抗體進(jìn)行免疫沉淀，將與該抗體結(jié)合的蛋白質(zhì)-RNA復(fù)合物從細(xì)胞裂解液中分離出來。隨后，通過洗滌步驟去除非特異性結(jié)合的分子，保留與目標(biāo)蛋白質(zhì)特異性結(jié)合的RNA。接下來，從免疫沉淀復(fù)合物中提取RNA，并將其逆轉(zhuǎn)錄為cDNA。然后，利用特異性引物進(jìn)行qPCR反應(yīng)，以定量檢測(cè)與目標(biāo)蛋白質(zhì)結(jié)合的特定RNA分子的豐度。通過比較不同樣品中目標(biāo)RNA的相對(duì)表達(dá)水平，可以評(píng)估蛋白質(zhì)與RNA之間的結(jié)合強(qiáng)度和特異性。RIP-qPCR實(shí)驗(yàn)在生物學(xué)研究中具有廣泛應(yīng)用，可用于研究轉(zhuǎn)錄后調(diào)控、RNA轉(zhuǎn)運(yùn)、RNA穩(wěn)定性以及非編碼RNA與蛋白質(zhì)相互作用等方面的問題。該技術(shù)為揭示細(xì)胞內(nèi)基因表達(dá)調(diào)控的復(fù)雜網(wǎng)絡(luò)提供了有力工具。中國(guó)香港互作機(jī)制RIPRIP-qPCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)具有高特異性和靈敏度，能夠準(zhǔn)確測(cè)量RNA與蛋白質(zhì)的相互作用。

RIP-qPCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)雖然是一種強(qiáng)大的研究RNA與蛋白質(zhì)相互作用的方法，但也存在一些不足之處。技術(shù)難度較高：RIP-qPCR實(shí)驗(yàn)涉及多個(gè)復(fù)雜的步驟，包括細(xì)胞裂解、免疫沉淀、RNA提取、逆轉(zhuǎn)錄和實(shí)時(shí)定量PCR等。每一步都需要精確的操作和嚴(yán)格的實(shí)驗(yàn)條件控制，技術(shù)難度較高，需要經(jīng)驗(yàn)豐富的實(shí)驗(yàn)人員才能準(zhǔn)確完成。可能受到非特異性結(jié)合的干擾：盡管RIP技術(shù)利用特異性抗體來沉淀目標(biāo)RNA-蛋白質(zhì)復(fù)合物，但在某些情況下，非特異性結(jié)合可能會(huì)干擾實(shí)驗(yàn)結(jié)果。這可能導(dǎo)致假陽性或假陰性的結(jié)果，影響數(shù)據(jù)的準(zhǔn)確性和可靠性。抗體質(zhì)量要求高：RIP-qPCR實(shí)驗(yàn)的結(jié)果在很大程度上取決于所使用的抗體的質(zhì)量和特異性。如果抗體質(zhì)量不佳或特異性不強(qiáng)，可能會(huì)導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)失敗或結(jié)果不準(zhǔn)確。因此，在選擇抗體時(shí)需要充分的驗(yàn)證。RNA易降解：RNA分子在實(shí)驗(yàn)過程中很容易受到降解，特別是在不適當(dāng)?shù)膶?shí)驗(yàn)條件下，如存在RNase污染、操作時(shí)間過長(zhǎng)或溫度控制不當(dāng)?shù)?。RNA的降解會(huì)嚴(yán)重影響RIP-qPCR實(shí)驗(yàn)的結(jié)果，因此在實(shí)驗(yàn)過程中需要采取一系列措施來保護(hù)RNA的完整性。綜上所述，盡管RIP-qPCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)具有許多優(yōu)點(diǎn)，但也存在一些不足之處，需要在實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)和操作過程中予以充分考慮和應(yīng)對(duì)。

RIP實(shí)驗(yàn)免疫沉淀用磁珠的制備方法：1.將50μL的磁珠懸浮液轉(zhuǎn)移到每個(gè)管上（分組：AbvsIgG）。2.每管中加入0.5mLRIP洗滌緩沖液，短暫渦旋,將管子放在磁性分離器上,去上清。3.從磁鐵上取下試管。每管中加入0.5mLRIP洗滌緩沖液，短暫渦旋。4.將試管放在磁性分離器上，然后棄用上清液。5.從磁鐵上取出試管，并在100μL的RIP洗滌緩沖液中重新懸浮珠子。在試管中加入目標(biāo)抗體的~5μg。6.在室溫下旋轉(zhuǎn)孵育30分鐘。7.將試管短暫離心，放置在磁性分離器上，棄用上清液。8.從磁鐵上取下試管。每管中加入0.5mLRIP洗滌緩沖液，短暫渦旋。9.將試管放在磁性分離器上，然后棄用上清液。重復(fù)清洗1次10.從磁鐵上取下試管。每管中加入0.5mLRIP洗滌緩沖液，短暫渦旋。把管子放在冰上。廣州基云生物，在IP互作組檢測(cè)和關(guān)鍵機(jī)制分子篩選驗(yàn)證領(lǐng)域，具有豐富的經(jīng)驗(yàn)，助力您的互作機(jī)制研究，如有相關(guān)問題，歡迎聯(lián)系溝通探討。如何找與蛋白互作的lncRNA。

RNA Immunoprecipitation是研究細(xì)胞內(nèi)RNA與蛋白結(jié)合情況的技術(shù)，是了解轉(zhuǎn)錄后調(diào)控網(wǎng)絡(luò)動(dòng)態(tài)過程的有力工具，能幫助我們發(fā)現(xiàn)miRNA的調(diào)節(jié)靶點(diǎn)。

這種技術(shù)運(yùn)用針對(duì)目標(biāo)蛋白的抗體把相應(yīng)的RNA-蛋白復(fù)合物沉淀下來，然后經(jīng)過分離純化就可以對(duì)結(jié)合在復(fù)合物上的RNA進(jìn)行測(cè)序分析。RIP可以看成是普遍使用的染色質(zhì)免YI沉淀ChIP技術(shù)的類似應(yīng)用，但由于研究對(duì)象是RNA-蛋白復(fù)合物而不是DNA-蛋白復(fù)合物，RIP實(shí)驗(yàn)的優(yōu)化條件與ChIP實(shí)驗(yàn)不太相同（如復(fù)合物不需要固定，RIP反應(yīng)體系中的試劑和抗體不能含有RNA酶，抗體需經(jīng)RIP實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證等等）。RIP技術(shù)下游結(jié)合microarray技術(shù)被稱為RIP-Chip，幫助我們更高通量地了解AI癥以及其它JI病整體水平的RNA變化。 若想要快速了解RIP-qPCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)，可以采取哪些方法。河南RNA蛋白相互作用RIP-RT-PCR檢測(cè)

做好RIP-qPCR實(shí)驗(yàn)，應(yīng)避免哪些常見問題。江西RNA免疫共沉淀檢測(cè)RIP-Sequence

RIP實(shí)驗(yàn)細(xì)胞裂解(對(duì)于單層細(xì)胞或貼壁細(xì)胞)方法步驟：

用10mL冰冷的PBS洗滌培養(yǎng)瓶或平板上的細(xì)胞兩次。

加入10mL冰冷的PBS。從每個(gè)培養(yǎng)瓶或平板上刮下細(xì)胞，然后轉(zhuǎn)移到離心管。

通過在4℃下以1500rpm離心5分鐘來收集細(xì)胞，并丟棄上清液。

在等體積的完全RIP裂解緩沖液中重新懸浮細(xì)胞顆粒。通過上下移液混合，直到細(xì)胞被分散，混合物呈現(xiàn)均勻。將裂解液放在冰上孵育5min。這一步允許低滲RIP緩沖液膨脹細(xì)胞。將每個(gè)裂解液的~200μL分配到無核酸酶的微離心管中，并在-80℃下保存。 江西RNA免疫共沉淀檢測(cè)RIP-Sequence