超濾離心管應(yīng)用：除鹽、滲濾或更換緩沖液；濃縮含有抗原、抗體、酶、核酸（單株或雙株 DNA/RNA 樣本）、微生物、洗出液和凈化樣本的生物樣本；凈化組織培養(yǎng)基提取液和細胞溶解液中的大分子成分，從反應(yīng)混合液中去除引物、連接或分子標記，在 HPLC 之前去除蛋白質(zhì)。產(chǎn)品組成：超濾離心管包括一個蓋子、一個過濾器和一個離心管。產(chǎn)品特點：較高的樣品回收率 (> 90% 的樣品回收率 )；垂直膜的設(shè)計減少濃縮所用時間（10-15分鐘）；經(jīng)過嚴格的泄漏測試；無 DNase、RNase，無熱原、無內(nèi)元素。使用這個超濾管，廠家強調(diào)一定是一次性的，這個超濾管必須只能使用一次，不能重復(fù)使用！超濾離心管可以有效地去除溶液中的雜質(zhì)，使樣品更純凈。臺州蛋白分離離心管采購

我們通常會以1/3到1/6甚至更低的區(qū)間來選擇超濾管的孔徑，通常更小的孔徑會使回收率提高但是超濾的時間也會比較長。一定范圍內(nèi)，超濾的回收率和速度是一對矛盾體，因此可以通過優(yōu)化孔徑的選擇，在回收率可以接受的條件下選擇較大的孔徑，來提高超濾的速度。低溫如< 10 ℃，液體的粘度會增加，流動性會降低，因此液體的跨膜速率也會降低。適當(dāng)提高超濾溫度，往往能夠提高超濾的速度。有些客戶需要做幾十ml到幾百ml樣品的濃縮或者緩沖液置換，但是卻使用1支或幾支15ml的超濾管反復(fù)離心來完成操作，這樣必然造成時間上的浪費。怎么辦？一定要挑選適合處理量的產(chǎn)品，減少不必要的反復(fù)離心從而提升超濾的效率。河南再生纖維素離心管規(guī)格使用超濾離心管時應(yīng)注意避免污染和交叉?zhèn)鞑?，并對設(shè)備進行徹底清潔消毒。

離心管,管狀試樣容器，可帶密封蓋或壓蓋,是實驗室里面常見的一種實驗耗材，主要是配合離心機使用，即將實驗液體裝在其中，然后放在離心機里面離心。進口離心管按照材料分類：塑料離心管，玻璃離心管，鋼制離心管，又可以分為PP、PC、PS等，根據(jù)不同需要，生產(chǎn)廠家會選擇不同的塑料材料來進行制作。根據(jù)其大小，又分為1.5ml、2ml、5ml、10ml、15ml、50ml等，國產(chǎn)的離心管一般就是這幾個規(guī)格，用的較多的也就是10ml和50ml的。如果您的離心機是配30ml或者其他規(guī)格的離心管時，就要考慮進口的了。另外，離心管還有圓底和尖底，以及螺旋蓋和插蓋之分。螺旋蓋的離心管帶有較精細的刻度，插蓋的只有一個總體的容量標示。

脫鹽、更換緩沖液或滲濾是從含有生物分子的溶液中去除鹽分或溶劑的重要方法。鹽分去除或緩沖液更換可通過超濾管來完成，具體過程是濃縮樣本，棄去濾出液,然后向濃縮液中加入任何所需的溶劑,恢復(fù)到樣本原先的體積。"洗出"的過程可反復(fù)進行，直到雜質(zhì)的濃度被充分降低。關(guān)于超濾管的常見問題與解答：Q:超濾管的膜材質(zhì)是什么?A:超濾管的膜材質(zhì)為默克密理博特有的Ultracel再生纖維素膜，生產(chǎn)工藝嚴格,截留分子量明確而準， 蛋白吸附損失小。Q:如果要用超濾的方法分離兩種蛋白，那么這兩個蛋白的大小需要相差多少?A:按照經(jīng)驗,建議兩個蛋白的分子量要相差 一個數(shù)量級(10倍)。超濾離心管可以用于提取動植物組織中的酶、元素等生物活性分子，以進行進一步的生化學(xué)和醫(yī)學(xué)研究。

使用后用0.1M NaOH泡24h，然后20%乙醇浸泡保存。這個我是聽老板們說的，的確乙醇泡完后孔徑會增大，基本就是5-10KD較大，也就是說如果你的蛋白在21KD以上，應(yīng)該沒問題。或者可以不用乙醇泡，用NaOH洗之后直接用無菌水保存，每周換一下液體，應(yīng)該沒有問題?？纯凑f明書不就結(jié)了！我原來在CRO的時候一直是重復(fù)用的，也沒見什么不好啊！短期會用的話，用20%的乙醇泡著，回頭拼命用millipore的水充干凈，然后在用樣品緩沖液平衡一下就好，至于有些人說的改變孔徑，也沒那么大影響的，你至少跟目的蛋白分子量差別3倍的截留分子量才安全的不是嗎?1個月以內(nèi)不用的話，建議用100mM的NaOH保存！更長時間的話加0.02%的疊氮鈉，但那個東西強致疾病物，不建議使用。理論上截留目標物，孔徑應(yīng)選1/3~1/5的膜；透過目標物，孔徑應(yīng)選5-10倍的膜。離心機轉(zhuǎn)速會影響到超濾效果，因此需要根據(jù)實驗要求調(diào)整相應(yīng)的轉(zhuǎn)速。溫州小型超濾離心管推薦

超濾離心管也可用于從血漿或尿液中提取蛋白質(zhì)和核酸等大分子化合物。臺州蛋白分離離心管采購

當(dāng)濃縮到剩下1ml時，取50ul緩沖溶液，加入10ul流穿，看有沒變藍色，以此判斷超濾管是否漏掉蛋白。如果管漏了，將上層和流穿重新倒入新管中開始超濾。要精確判斷是否漏管，用5mgml的BSA離心10min，再取流穿，跑蛋白膠或Bradford粗測，繼續(xù)加入剩下的蛋白液濃縮（在冰上操作，防止蛋白受熱），直到所有濃縮液都加完為止。離心過程中注意是否發(fā)生蛋白沉淀，導(dǎo)致堵管。若發(fā)生沉淀，要確定沉淀的具體原因，是蛋白濃度過高還是Buffer不合適；前者可用多根超濾管同時超濾，降低濃度的辦法解決，后者的方法是換不同的緩沖溶液，直到蛋白不發(fā)生沉淀為止。臺州蛋白分離離心管采購